vestnik-bio-msuВестник Московского университета. Серия 16. БиологияVestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya0137-0952Lomonosov Moscow State University, School of Biology10.55959/MSU0137-0952-16-78-1-4vestnik-bio-msu-1209Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯRESEARCH ARTICLESМикобиота красной водоросли Palmaria palmata в Кандалакшском заливе Белого моряMycobiota of the red algae Palmaria palmata in the Kandalaksha Bay of the White SeaКоваленкоМ. И.KovalenkoM. I.

Коваленко Мария Игоревна – бакалавр кафедры микологии и альгологии биологического факультета МГУ

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12

Mycology and Alogology Department, Faculty of Biology

Leninskie gory 1–12, Moscow, 119234

 

kovalenko@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-7657-6474ГеоргиеваМ. Л.GeorgievaM. L.

Георгиева Марина Леонидовна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник кафедры микологии и альгологии биологического факультета МГУ; научный сотрудник лаборатории таксономического изучения и коллекции культур микроорганизмов Научно-исследовательского института по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. Гаузе

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12,

119021, г. Москва, ул. Большая Пироговская, д. 11, стр. 1

Mycology and Alogology Department, Faculty of Biology, Lomonosov Moscow State University

Leninskie gory 1–12, Moscow, 119234,

St. Bolshaya Pirogovskaya, 11, Moscow, 119021

i-marina@yandex.ruКозловскийВ. В.KozlovskyV. V.

Козловский Владислав Владимирович – кандидат биологических наук, начальник отдела экологии Центра морских исследований МГУ

119234, г. Москва, Ленинские горы, вл. 1, стр. 77, Научный парк МГУ, офис 402

Marine research center

office 402, MSU Science park, Leninskie Gory 1–77, 119234, Moscow

vladkst@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0003-3030-6417МаксимоваИ. А.MaximovaI. A.

Максимова Ирина Аркадьевна – кандидат биологических наук, старший научный сотрудник кафедры биологии почв факультета почвоведения МГУ

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12

Leninskie gory 1–12, Moscow, 119234

maximova.irina@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0002-4494-2468КачалкинА. В.KachalkinA. V.

Качалкин Алексей Владимирович – кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник кафедры биологии почв факультета почвоведения МГУ, ведущий научный сотрудник Всероссийской коллекции микроорганизмов Института биохимии и физиологии микроорганизмов РАН Пущинского научного центра биологических исследований

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12,

142290, г. Пущино, пр. Науки, д. 5

Leninskie gory 1–12, Moscow, 119234,

pr. Nauki 5, Pushchino, 142290 Moscow Region

kachalkin_a@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0002-6921-8724БубноваЕ. Н.BubnovaE. N.

Бубнова Екатерина Николаевна – кандидат биологических наук, научный сотрудник Беломорской биостанции имени Н.А. Перцова биологического факультета

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12

White Sea Bilogical Station, Faculty of Biology

Leninskie gory 1–12, Moscow, 119234

katya.bubnova@wsbs-msu.ruМосковский государственный университет имени М.В. ЛомоносоваРоссияLomonosov Moscow State UniversityRussian FederationМосковский государственный университет имени М.В. Ломоносова; Научно-исследовательский институт по изысканию новых антибиотиков имени Г.Ф. ГаузеРоссияLomonosov Moscow State University; Gause Institute of New AntibioticsRussian FederationМосковский государственный университет имени М.В. ЛомоносоваРоссияMoscow State UniversityRussian FederationМосковский государственный университет имени М.В. ЛомоносоваРоссияSchool of Soil Sciences, Lomonosov Moscow State UniversityRussian FederationМосковский государственный университет имени М.В. Ломоносова; Пущинский научный центр биологических исследований РАН, Институт биохимии и физиологии микроорганизмов имени Г.К. Скрябина РАНРоссияSchool of Soil Sciences, Lomonosov Moscow State University; Pushchino Scientific Center for Biological Research of the Russian Academy of Sciences, G.K. Skryabin Institute of Biochemistry and Physiology of Microorganisms of the Russian Academy of SciencesRussian Federation2023250320237812534Copyright © Коваленко М.И., Георгиева М.Л., Козловский В.В., Максимова И.А., Качалкин А.В., Бубнова Е.Н., 20232023Коваленко М.И., Георгиева М.Л., Козловский В.В., Максимова И.А., Качалкин А.В., Бубнова Е.Н.Kovalenko M.I., Georgieva M.L., Kozlovsky V.V., Maximova I.A., Kachalkin A.V., Bubnova E.N.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1209

Проведено исследование разнообразия микромицетов, ассоциированных с живыми талломами съедобной красной водоросли Palmaria palmata (дульс) в Белом море. Образцы отбирали в Кандалакшском заливе, на верхней (10 талломов на литорали) и нижней (10 талломов в сублиторали) границах распространения вида. Работу проводили культуральными методами, грибы выделяли с поверхности талломов. С одного образца водоросли выделялось от 0 до 55 колоний; максимальное число морфотипов – 24. Общее разнообразие составило 52 морфотипа, из которых 48 мицелиальных и 4 дрожжевых. Все идентифицированные дрожжи относятся к отделу Basidiomycota; среди мицелиальных грибов 2 вида принадлежат к отделу Mucoromycota, остальные – к отделу Ascomycota, абсолютное большинство из которых – анаморфы. Наиболее разнообразными были представители родов Acremonium (10 морфотипов), Penicillium (9) и Cladosporium (6); самыми многочисленными – Acremonium (158 колоний) и Cladosporium (103). Acremonium fuci – вид, наиболее широко представленный на исследованных талломах (122 колонии на 15 талломах). Важнейшим фактором для формирования поверхностной микобиоты Р. palmata является местообитание: литоральные и сублиторальные популяции водоросли существенно различаются по численности и структуре сообществ грибов. Талломы литоральной популяции значительно богаче грибами, здесь преобладают темноокрашенные виды, Acremonium fuci и Sarocladium strictum. В микобиоте сублиторальных образцов – светлоокрашенные виды, отсюда же выделено большинство дрожжей.

This is a first report about the diversity of micromycetes associated with living thalli of the edible red algae Palmaria palmata (dulse). We collected samples in the Kandalaksha Bay of the White Sea at upper (10 thalli in the littoral) and lower (10 thalli in the sublittoral) lines of this species distribution. The work was carried out by cultural methods, fungi were isolated from the surface of thalli. From one thallus from 0 to 55 colonies belongs to 0–24 morphotypes were isolated. The total diversity was 52 morphotypes, of which 48 were mycelia and 4 were yeast. All identified yeasts belong to Basidiomycota; among filamentous fungi, 2 species belongs to Zygomycota, and the rest belongs to Ascomycota, the vast majority of which are represented by anamorphic stages. The most diverse genera were Acremonium (10 morphotypes), Penicillium (9) and Cladosporium (6); the most numerous are Acremonium (158 colonies) and Cladosporium (103 colonies). Acremonium fuci is the most common species on the studied thalli (122 colonies on 15 thalli). The most important factor for the formation of the surface mycobiota of dulse is the habitat: littoral and sublittoral algal populations differ significantly in the fungal communities number and structure. The thalli of the littoral population are much richer in fungi. The mycobiota of littoral samples in dominated by dark-colored species, as well as Acremonium fuci and Sarocladium strictum. While the mycobiota of sublittoral samples is dominated by light-colored species, and most of the isolated yeasts were also founded here.

морские грибыводоросли-макрофитыRhodophytaPalmariaдульсБелое мореmarine fungiseaweedsRhodophytaPalmariadulseWhite SeaReferencesRaghukumar S. Fungi in coastal and oceanic marine ecosystems. Germany: Springer, 2017. 378 pp.Raghukumar S. Fungi in coastal and oceanic marine ecosystems. Germany: Springer, 2017. 378 pp.Satheesh S., Siddik A.A., Ba-Akdah M.A., AlSofyani A.A. An introduction to the ecological significance of seaweeds on coastal ecosystems // Biotechnological applications of seaweeds / Ed. E. Nabti. N.Y.: Nova Sci. Publ. Inc., 2017. P. 1–14.Satheesh S., Siddik A.A., Ba-Akdah M.A., AlSofyani A.A. An introduction to the ecological significance of seaweeds on coastal ecosystems // Biotechnological applications of seaweeds / Ed. E. Nabti. N.Y.: Nova Sci. Publ. Inc., 2017. P. 1–14.Бубнова Е.Н., Киреев Я.В. Сообщества грибов на талломах бурых водорослей рода Fucus в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2009. Т. 43. № 5. С. 20–29.Бубнова Е.Н., Киреев Я.В. Сообщества грибов на талломах бурых водорослей рода Fucus в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2009. Т. 43. № 5. С. 20–29.Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Микобиота бурых водорослей Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata (Phaeophyceae, Fucales) в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2011. Т. 45. № 3. С. 240–248.Коновалова О.П., Бубнова Е.Н. Микобиота бурых водорослей Ascophyllum nodosum и Pelvetia canaliculata (Phaeophyceae, Fucales) в Кандалакшском заливе Белого моря // Микол. фитопатол. 2011. Т. 45. № 3. С. 240–248.Киричук Н.Н., Пивкин М.В. Вторичные морские грибы, ассоциированные с бурыми водорослями рода Sargassum залива Петра Великого (Японское море) // Микол. фитопатол. 2015. Т. 49. № 3. С. 146–150.Киричук Н.Н., Пивкин М.В. Вторичные морские грибы, ассоциированные с бурыми водорослями рода Sargassum залива Петра Великого (Японское море) // Микол. фитопатол. 2015. Т. 49. № 3. С. 146–150.Zuccaro A., Schulz B., Mitchell J.I. Molecular detection of ascomycetes associated with Fucus serratus // Mycol. Res. 2003. Vol. 107. N 12. P. 1451–1466.Zuccaro A., Schulz B., Mitchell J.I. Molecular detection of ascomycetes associated with Fucus serratus // Mycol. Res. 2003. Vol. 107. N 12. P. 1451–1466.Zuccaro A., Sammerbell R.C., Gams W., Schroers J.I., Mitchell L.I. A new Acremonium species associated with Fucus spp., and its affinity with a phylogenetically distinct marine Emericellopsis clade // Stud. Mycol. 2004. Vol. 50. N 2. P. 283–297.Zuccaro A., Sammerbell R.C., Gams W., Schroers J.I., Mitchell L.I. A new Acremonium species associated with Fucus spp., and its affinity with a phylogenetically distinct marine Emericellopsis clade // Stud. Mycol. 2004. Vol. 50. N 2. P. 283–297.Zuccaro A., Schoch C.L. Spatafora J.W., Kohlmeyer J., Draeger S., Mitchell J.I. Detection and identification of fungi intimately associated with the brown seaweed Fucus serratus // Appl. Environ. Microbiol. 2008. Vol. 74. N 4. P. 931–941.Zuccaro A., Schoch C.L. Spatafora J.W., Kohlmeyer J., Draeger S., Mitchell J.I. Detection and identification of fungi intimately associated with the brown seaweed Fucus serratus // Appl. Environ. Microbiol. 2008. Vol. 74. N 4. P. 931–941.Kononenko G.P., Burkin A.A., Georgiev A.A., Georgieva M.L. Mycotoxins in macroalgae from the Velikaya Salma strait of the Kandalaksha Gulf of the White Sea // Russ. J. Mar. Biol. 2021. Vol. 47. N 1. P. 480–488.Kononenko G.P., Burkin A.A., Georgiev A.A., Georgieva M.L. Mycotoxins in macroalgae from the Velikaya Salma strait of the Kandalaksha Gulf of the White Sea // Russ. J. Mar. Biol. 2021. Vol. 47. N 1. P. 480–488.Railkin A., Ganf T., Manylov O. Marine biofouling. CLC Press, 2003. 303 pp.Railkin A., Ganf T., Manylov O. Marine biofouling. CLC Press, 2003. 303 pp.Chen J., Zang Y., Yang Z., Qu T, Sun T., Liang S., Zhu M., Wang Y., Tang X. Composition and functional diversity of epiphytic bacterial and fungal communities on marine macrophytes in an intertidal zone // Front. Microbiol. 2022. Vol. 13: 839465.Chen J., Zang Y., Yang Z., Qu T, Sun T., Liang S., Zhu M., Wang Y., Tang X. Composition and functional diversity of epiphytic bacterial and fungal communities on marine macrophytes in an intertidal zone // Front. Microbiol. 2022. Vol. 13: 839465.Seshadri R., Sieburth J.N. Cultural estimation of yeasts on seaweeds // Appl. Microbiol. 1971. Vol. 12. N 4. P. 507–512.Seshadri R., Sieburth J.N. Cultural estimation of yeasts on seaweeds // Appl. Microbiol. 1971. Vol. 12. N 4. P. 507–512.Abdel-Gawad K.M., Hifney A.F., Issa A.A Gomaa M. Spatio-temporal, environmental factors, and host identity shape culturable-epibiotic fungi of seaweeds in the Red Sea, Egypt // Hydrobiologia. 2014. Vol. 740. N 1. P. 37–49.Abdel-Gawad K.M., Hifney A.F., Issa A.A Gomaa M. Spatio-temporal, environmental factors, and host identity shape culturable-epibiotic fungi of seaweeds in the Red Sea, Egypt // Hydrobiologia. 2014. Vol. 740. N 1. P. 37–49.Mouritsen O.G., Dawczynski C., Duelund L., Jahreis G., Vetter W., Schröder M. On the human consumption of the red seaweed dulse (Palmaria palmata (L.) Weber & Mohr) // J. Appl. Phycol. 2013. Vol. 25. N 6. P. 1777–1791.Mouritsen O.G., Dawczynski C., Duelund L., Jahreis G., Vetter W., Schröder M. On the human consumption of the red seaweed dulse (Palmaria palmata (L.) Weber & Mohr) // J. Appl. Phycol. 2013. Vol. 25. N 6. P. 1777–1791.Grote B. Recent developments in aquaculture of Palmaria palmata (L.) Weber & Mohr: cultivation and uses // Rev. Aquac. 2019. Vol. 11. N 1. P. 25–41.Grote B. Recent developments in aquaculture of Palmaria palmata (L.) Weber & Mohr: cultivation and uses // Rev. Aquac. 2019. Vol. 11. N 1. P. 25–41.Voskoboinikov G.M., Ryzhik I.V., Salakhov D.O., Metelkova L.O., Zhakovskaya Z.A., Lopuchanskaya E.M. Absorption and conversion of diesel fuel by the Red Alga Palmaria palmata (Linnaeus) F. Weber et D. Mohr, 1805 (Rhodophyta): the potential role of alga in bioremediation of sea water // Russ. J. Mar. Biol. 2020. Vol. 46. N 2. P. 113–119.Voskoboinikov G.M., Ryzhik I.V., Salakhov D.O., Metelkova L.O., Zhakovskaya Z.A., Lopuchanskaya E.M. Absorption and conversion of diesel fuel by the Red Alga Palmaria palmata (Linnaeus) F. Weber et D. Mohr, 1805 (Rhodophyta): the potential role of alga in bioremediation of sea water // Russ. J. Mar. Biol. 2020. Vol. 46. N 2. P. 113–119.Lopes D., Melo T., Meneses J., Abreu M.H., Pereira R., Domingues P., Lillebo A.I., Calado R., Domingues M.R. A new look for the red macroalga Palmaria palmata: a seafood with polar lipids rich in EPA and with antioxidant properties // Marine Drugs. 2019. Vol. 17. N 9: 533.Lopes D., Melo T., Meneses J., Abreu M.H., Pereira R., Domingues P., Lillebo A.I., Calado R., Domingues M.R. A new look for the red macroalga Palmaria palmata: a seafood with polar lipids rich in EPA and with antioxidant properties // Marine Drugs. 2019. Vol. 17. N 9: 533.Nishida Y., Kumagai Y., Michiba S., Yasui H., Kishimura H. Efficient extraction and antioxidant capacity of mycosporine-like amino acid from red algae dulse Palmaria palmata in Japan // Marine Drugs. 2020. Vol. 18. N 10: 502.Nishida Y., Kumagai Y., Michiba S., Yasui H., Kishimura H. Efficient extraction and antioxidant capacity of mycosporine-like amino acid from red algae dulse Palmaria palmata in Japan // Marine Drugs. 2020. Vol. 18. N 10: 502.Moore J.E., Xu J., Millar C. Diversity of the microflora of edible macroalga Palmaria palmata // Food Microbiol. 2002. Vol. 19. N 2–3. P. 249–257.Moore J.E., Xu J., Millar C. Diversity of the microflora of edible macroalga Palmaria palmata // Food Microbiol. 2002. Vol. 19. N 2–3. P. 249–257.Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine mycology, the higher fungi. N.Y.: Academic Press, 1979. 691 pp.Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine mycology, the higher fungi. N.Y.: Academic Press, 1979. 691 pp.Flewelling A.J., Ellsworth K.T., Sanford J., Forward E., Johnson J.A., Gray C.A. Macroalgal endophytes from the atlantic coast of Canada: a potential source of antibiotic natural products? // Microorganisms. 2013. Vol. 1. N 1. P. 175–187.Flewelling A.J., Ellsworth K.T., Sanford J., Forward E., Johnson J.A., Gray C.A. Macroalgal endophytes from the atlantic coast of Canada: a potential source of antibiotic natural products? // Microorganisms. 2013. Vol. 1. N 1. P. 175–187.Flewelling A.J., Currie J., Gray C.A., Johnson J.A. Endophytes from marine algae: promising sources of novel natural products // Curr. Sci. 2015. Vol. 109. N 1. P. 88–111.Flewelling A.J., Currie J., Gray C.A., Johnson J.A. Endophytes from marine algae: promising sources of novel natural products // Curr. Sci. 2015. Vol. 109. N 1. P. 88–111.Nadson G.A., Burgvits G.K. Yeast of the Arctic Ocean // Doklady Akademii Nauk SSSR. 1931. N 4. P. 103–110.Nadson G.A., Burgvits G.K. Yeast of the Arctic Ocean // Doklady Akademii Nauk SSSR. 1931. N 4. P. 103–110.Domsсh K.H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of the soil fungi. Acad. Press, 1980. 1070 pp.Domsсh K.H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of the soil fungi. Acad. Press, 1980. 1070 pp.Bissett J. Notes on Tolypocladium and related genera // Can. J. Bot. 1983. Vol. 61. N 5. P. 1311–1329.Bissett J. Notes on Tolypocladium and related genera // Can. J. Bot. 1983. Vol. 61. N 5. P. 1311–1329.Zalar P., Hoog G.S. de, Schroers H.-J., Crous P.W., Groenewald J.Z., Gunde-Cimerman N. Phylogeny and ecology of the ubiquitous saprobe Cladosporium sphaerospermum, with descriptions of seven new species from hypersaline environments // Stud. Mycol. 2007. Vol. 58. P. 157–183.Zalar P., Hoog G.S. de, Schroers H.-J., Crous P.W., Groenewald J.Z., Gunde-Cimerman N. Phylogeny and ecology of the ubiquitous saprobe Cladosporium sphaerospermum, with descriptions of seven new species from hypersaline environments // Stud. Mycol. 2007. Vol. 58. P. 157–183.Glushakova A.M., Kachalkin A.V. Endophytic yeasts in Malus domestica and Pyrus communis fruits under anthropogenic impact // Microbiology. 2017. Vol. 86. N 1. P. 128–135.Glushakova A.M., Kachalkin A.V. Endophytic yeasts in Malus domestica and Pyrus communis fruits under anthropogenic impact // Microbiology. 2017. Vol. 86. N 1. P. 128–135.Бубнова Е.Н., Грум-Гржимайло О.А., Козловский В.В. Состав и структура сообществ мицелиальных грибов в донных грунтах Белого моря // Вестник Моск. ун-та. Сер. 16. Биол. 2020. Т. 75. № 3. С. 182–187.Бубнова Е.Н., Грум-Гржимайло О.А., Козловский В.В. Состав и структура сообществ мицелиальных грибов в донных грунтах Белого моря // Вестник Моск. ун-та. Сер. 16. Биол. 2020. Т. 75. № 3. С. 182–187.Kachalkin A.V. Yeasts of the White Sea intertidal zone and description of Glaciozyma litorale sp. nov. // Antonie van Leeuwenhoek. 2014. Vol. 105. N 6. P. 1073–1083.Kachalkin A.V. Yeasts of the White Sea intertidal zone and description of Glaciozyma litorale sp. nov. // Antonie van Leeuwenhoek. 2014. Vol. 105. N 6. P. 1073–1083.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.