Рассеянный склероз. Некоторые особенности патологии и возможные пути терапии. Часть 2
https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-79-4-1
Аннотация
Рассеянный склероз (РС) входит в число наиболее распространенных неврологических заболеваний. Количество страдающих от РС постоянно растет во всем мире. Заболевание в отсутствие лечения приводит к инвалидизации наиболее трудоспособной части населения молодого возраста, а в последние годы стало все чаще диагносцироваться и у пожилых пациентов. Вторая часть нашего обзора посвящена перспективам методов терапии РС, находящихся в стадии разработки. В качестве мишеней при лечении РС рассмотрены митохондрии с использованием митоходриально-направленных антиоксидантов, нейтрофилы, а также затронутые патологией клетки иммунитета и другие специализированные клетки, перепрограммировать и заместить которые на здоровые можно при помощи стволовых клеток, незрелые олигодендроциты, ускоренно созревающие и вызывающие ремиелинизацию аксонов при воздействии антигистаминного препарата. Гельминтотерапия, сопровождающаяся смещением состава микробиоты больных РС и выделением антиоксидантов в ткани человека и модельных животных, может приводить к иммуномодуляции и снижению окислительного стресса, обеспечивая значительное ослабление заболевания. Обсуждаются подходы к лечению пожилых больных РС.
Ключевые слова
Об авторах
Е. К. ФетисоваРоссия
Фетисова Елена Константиновна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. отдела математических методов в биологии
119991, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 40, Тел.: 8-495-939-55-50
Н. В. Воробьева
Россия
Воробьева Нина Викторовна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. кафедры иммунологии
119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12, Тел.: 8-495-939-46-46
М. С. Мунтян
Россия
Мунтян Мария Сергеевна – канд. биол. наук, вед. науч. сотр. отдела биоэнергетики
119991, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 40, Тел.: 8-495-939-53-60
Список литературы
1. Huang W.J., Chen W.W., Zhang X. Multiple sclerosis: Pathology, diagnosis and treatments. Exp. Ther. Med. 2017;13(6):3163–3166.
2. Hauser S.L., Cree B.A.C. Treatment of multiple sclerosis: A review. Am. J. Med. 2020;133(12):1380-1390.e2.
3. Macaron G., Larochelle C., Arbour N., Galmard M., Girard J.M., Prat A., Duquette P. Impact of aging on treatment considerations for multiple sclerosis patients. Front. Neurol. 2023;14:1197212.
4. Ostolaza A., Corroza J., Ayuso T. Multiple sclerosis and aging: comorbidity and treatment challenges. Mult. Scler. Relat. Disord. 2021;50:102815.
5. Zhang Y., Atkinson J., Burd C.E., Graves J., Segal B.M. Biological aging in multiple sclerosis. Mult. Scler. 2023;29(14):1701–1708.
6. Zeydan B., Kantarci O.H. Impact of age on multiple sclerosis disease activity and progression. Curr. Neurol. Neurosci. Rep. 2020;20(7):24.
7. Fetisova E., Vorobjeva N., Muntyan M. Multiple sclerosis. Some features of pathology and prospects for therapy. Part 1. Adv. Gerontol. 2024;14(2):35–48.
8. Vorobjeva N.V., Chernyak B.V. NETosis: molecular mechanisms, role in physiology and pathology. Biochemistry (Mosc.). 2020;85(10):1178–1190.
9. De Bondt M., Hellings N., Opdenakker G., Struyf S. Neutrophils: underestimated players in the pathogenesis of multiple sclerosis (MS). Int. J. Mol. Sci. 2020;21(12):4558.
10. Dhaiban S., Al-Ani M., Elemam N.M., AlAawad M.H., Al-Rawi Z., Maghazachi A.A. Role of peripheral immune cells in multiple sclerosis and experimental autoimmune encephalomyelitis. Science. 2021;3(1):12.
11. Grebenciucova E., Pruitt A. Infections in patients receiving multiple sclerosis disease-modifying therapies. Curr. Neurol. Neurosci. Rep. 2017;17(11):88.
12. Fetisova E., Chernyak B., Korshunova G., Muntyan M., Skulachev V. Mitochondria-targeted antioxidants as a prospective therapeutic strategy for multiple sclerosis. Curr. Med. Chem. 2017;24(19):2086–2114.
13. Fetisova E.K., Muntyan M.S., Lyamzaev K.G., Chernyak B.V. Therapeutic effect of the mitochondriatargeted antioxidant SkQ1 on the culture model of multiple sclerosis. Oxid. Med. Cell. Longev. 2019;2019:2082561.
14. Fock E.M., Parnova R.G. Protective effect of mitochondria-targeted antioxidants against inflammatory response to lipopolysaccharide challenge: a review. Pharmaceutics. 2021;13(2):144.
15. Jiang Q., Yin J., Chen J., Ma X., Wu M., Liu G., Yao K., Tan B., Yin Y. Mitochondria-targeted antioxidants: a step towards disease treatment. Oxid. Med. Cell. Longev. 2020;2020:8837893.
16. Liberman E.A., Topaly V.P., Tsofina L.M., Jasaitis A.A., Skulachev V.P. Mechanism of coupling of oxidative phosphorylation and the membrane potential of mitochondria. Nature. 1969;222(5198):1076–1078.
17. Korshunova G.A., Shishkina A.V., Skulachev M.V. Design, synthesis, and some aspects of the biological activity of mitochondria-targeted antioxidants. Biochemistry (Mosc.). 2017;82(7):760–777.
18. Fields M., Marcuzzi A., Gonelli A., Celeghini C., Maximova N., Rimondi E. Mitochondria-targeted antioxidants, an innovative class of antioxidant compounds for neurodegenerative diseases: perspectives and limitations. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(4):3739.
19. Skulachev V.P., Antonenko Y.N., Cherepanov D.A., et al. Prevention of cardiolipin oxidation and fatty acid cycling as two antioxidant mechanisms of cationic derivatives of plastoquinone (SkQs). Biochim. Biophys. Acta BBA-Bioenergetics. 2010;1797(6–7):878–89.
20. Antonenko Y.N., Avetisyan A.V., Bakeeva L.E., et al. Mitochondria-targeted plastoquinone derivatives as tools to interrupt execution of the aging program. 1. Cationic plastoquinone derivatives: synthesis and in vitro studies. Biochemistry (Mosc.). 2008;73(12):1273–1287.
21. Murphy M.P., Smith R.A.J. Targeting antioxidants to mitochondria by conjugation to lipophilic cations. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2007;47(1):629–656.
22. Открытое исследование I фазы по изучению фармакокинетики, безопасности и переносимости препарата Пластомитин® при однократном приеме возрастающих доз у здоровых добровольцев. (Ответственный исследователь Щукин И.А.) [Электронный ресурс]. Государственный реестр лекарственных средств. 2016. Дата обновления: 15.12.2024. URL: https://grlsbase.ru/clinicaltrails/clintrail/3570 (дата обращения: 15.12.2024).
23. Fassas A., Anagnostopoulos A., Kazis A., Kapinas K., Sakellari I., Kimiskidis V., Tsompanakou A. Peripheral blood stem cell transplantation in the treatment of progressive multiple sclerosis: first results of a pilot study. Bone Marrow Transpl. 1997;20(8):631–638.
24. Iacobaeus E., Kadri N., Lefsihane K., Boberg E., Gavin C., Törnqvist Andrén A., Lilja A., Brundin L., Blanc K.L. Short and long term clinical and immunologic follow up after bone marrow mesenchymal stromal cell therapy in progressive multiple sclerosis – a phase I study. J. Clin. Med. 2019;8(12):2102.
25. Федулов А.С., Борисов А.В., Зафранская М.М., Кривенко С.И., Марченко Л.Н., Качан Т.В., Московских Ю.В., Нижегородова Д.Б. Сравнительная оценка эффективности однократного и курсового применения аутологичной трансплантации мезенхимальных стволовых клеток в терапии рассеянного склероза. РМЖ. Медицинское обозрение. 2019;3(4-2):54–58.
26. Bisaga G.N., Topuzova M.P., Malko V.A., Motorin D.V., Alekseeva Yu.A., Badaev R.S., Krinitsina T.V., Alekseeva T.M. High-dose chemotherapy with autologous hematopoietic stem cell transplantation in multiple sclerosis: intermediate results of 3 years research. Russ. Neurol. J. 2022;27(6):22–31.
27. Pluchino S., Quattrini A., Brambilla E., Gritti A., Salani G., Dina G., Galli R., Del Carro U., Amadio S., Bergami A., Furlan R., Comi G., Vescovi A.L., Martino G. Injection of adult neurospheres induces recovery in a chronic model of multiple sclerosis. Nature. 2003;422(6933):688–694.
28. Genchi A., Brambilla E., Sangalli F., et al. Neural stem cell transplantation in patients with progressive multiple sclerosis: an open-label, phase 1 study. Nat. Med. 2023;29(1):75–85.
29. Uccelli A., Laroni A., Ali R., et al. Safety, tolerability, and activity of mesenchymal stem cells versus placebo in multiple sclerosis (MESEMS): a phase 2, randomised, double-blind crossover trial. Lancet Neurol. 2021;20(11):917–929.
30. Сороковикова Т.В., Морозов А.М., Крюкова А.Н., Наумова С.А., Беляк М.А. Перспективы лечения прогрессирующих форм рассеяного склероза трасплантацией стволовых клеток (обзор литературы). Вестник медицинского института «Реавиз». Реабилитация, врач и здоровье. 2023;13(4):154–161.
31. Cecerska-Heryć E., Pękała M., Serwin N., Gliźniewicz M., Grygorcewicz B., Michalczyk A., Heryć R., Budkowska M., Dołęgowska B. The use of stem cells as a potential treatment method for selected neurodegenerative diseases: review. Cell Mol. Neurobiol. 2023;43(6):2643–2673.
32. Xie C., Liu Y.Q., Guan Y.T., Zhang G.X. Induced stem cells as a novel multiple sclerosis therapy. Curr. Stem Cell Res. Ther. 2016;11(4):313–320.
33. Yun W., Choi K.A., Hwang I., et al. OCT4-induced oligodendrocyte progenitor cells promote remyelination and ameliorate disease. NPJ Regen. Med. 2022;7(1):4.
34. Wang Y., Chang K., Liu C., Na W., Jiang Z., Xiong J. Clemastine promotes oligodendrocyte precursor cell differentiation and myelination after acute radiation injury. J. Radiat. Res. Radiat. Proces. 2023;39(5):48–55.
35. Caverzasi E., Papinutto N., Cordano C., Kirkish G., Gundel T.J., Zhu A., Akula A.V., Boscardin W.J., Neeb H., Henry R.G., Chan J.R., Green A.J. MWF of the corpus callosum is a robust measure of remyelination: Results from the ReBUILD trial. Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 2023;120(20):e2217635120.
36. Hansen C.S., Hasseldam H., Bacher I.H., Thamsborg S.M., Johansen F.F., Kringel H. Trichuris suis secrete products that reduce disease severity in a multiple sclerosis model. Acta Parasitol. 2017;62(1):22–28.
37. Fleming J., Hernandez G., Hartman L., Maksimovic J., Nace S., Lawler B., Risa T., Cook T., Agni R., Reichelderfer M., Luzzio C., Rolak L., Field A., Fabry Z. Safety and efficacy of helminth treatment in relapsing-remitting multiple sclerosis: results of the HINT 2 clinical trial. Mult. Scler. J. 2019;25(1):81–91.
38. Yordanova I.A., Ebner F., Schulz A.R., Steinfelder S., Rosche B., Bolze A., Paul F., Mei H.E., Hartmann S. The worm-specific immune response in multiple sclerosis patients receiving controlled Trichuris suis ova immunotherapy. Life (Basel). 2021;11(2):101.
39. Libbey J.E., Cusick M.F., Fujinami R.S. Role of pathogens in multiple sclerosis. Int. Rev. Immunol. 2014;33(4):266–283.
40. Tanasescu R., Tench C.R., Constantinescu C.S., Telford G., Singh S., Frakich N., Onion D., Auer D.P., Gran B., Evangelou N., Falah Y., Ranshaw C., Cantacessi C., Jenkins T.P., Pritchard D.I. Hookworm treatment for relapsing multiple sclerosis: a randomized double-blinded placebo-controlled trial. JAMA Neurol. 2020;77(9):1089–1098.
41. Jenkins T.P., Pritchard D.I., Tanasescu R., Telford G., Papaiakovou M., Scotti R., Cortés A., Constantinescu C.S., Cantacessi C. Experimental infection with the hookworm, Necator americanus, is associated with stable gut microbial diversity in human volunteers with relapsing multiple sclerosis. BMC Biol. 2021;19(1):74.
42. Wegener Parfrey L., Jirků M., Šíma R., Jalovecka M., Sak B., Grigore K., Jirků Pomajbíková K. A benign helminth alters the host immune system and the gut microbiota in a rat model system. PLoS One. 2017;12(8):e0182205.
43. Calvani N.E.D., De Marco Verissimo C., Jewhurst H.L., Cwiklinski K., Flaus A., Dalton J.P. Two distinct superoxidase dismutases (SOD) secreted by the helminth parasite Fasciola hepatica play roles in defence against metabolic and host immune cell-derived reactive oxygen species (ROS) during growth and development. Antioxidants. 2022;11(10):1968.
44. Otero L., Bonilla M., Protasio A.V., Fernández C., Gladyshev V.N., Salinas G. Thioredoxin and glutathione systems differ in parasitic and free-living platyhelminths. BMC Genomics. 2010;11:237.
45. Xiang C., Zhong G., Wang H. IL-9 plays a critical role in helminth-induced protection against COVID-19- related cytokine storms. mBio. 2024;15(7):e0122924.
46. Cao Z., Wang J., Liu X., Liu Y., Li F., Liu M., Chiu S., Jin X. Helminth alleviates COVID-19-related cytokine storm in an IL-9-dependent way. mBio. 2024;15(6):e00905-24.
47. Solaro C., Ponzio M., Moran E., Tanganelli P., Pizio R., Ribizzi G., Venturi S., Mancardi G.L., Battaglia M.A. The changing face of multiple sclerosis: Prevalence and incidence in an aging population. Mult. Scler. 2015;21(10):1244–1250.
48. Marrie R.A., Cohen J., Stuve O., Trojano M., Sørensen P.S., Reingold S., Cutter G., Reider N. A systematic review of the incidence and prevalence of comorbidity in multiple sclerosis: overview. Mult. Scler. 2015;21(3):263–281.
49. Noseworthy J., Paty D., Wonnacott T., Feasby T., Ebers G. Multiple sclerosis after age 50. Neurology 1983;33(12):1537–1537.
50. Minden S.L., Frankel D., Hadden L.S., Srinath K.P., Perloff J.N. Disability in elderly people with multiple sclerosis: An analysis of baseline data from the Sonya Slifka Longitudinal Multiple Sclerosis Study. NeuroRehabilitation. 2004;19(1):55–67.
51. Zinganell A., Göbel G., Berek K., Hofer B., Asenbaum-Nan S., Barang M., Böck K., Bsteh C., Bsteh G., Eger S., Eggers C., Fertl E., Joldic D., Khalil M., Langenscheidt D. et al. Multiple sclerosis in the elderly: a retrospective cohort study. J. Neurol. 2024;271(2):674–687.
52. Weideman A.M., Tapia-Maltos M.A., Johnson K., Greenwood M., Bielekova B. Meta-analysis of the age-dependent efficacy of multiple sclerosis treatments. Front. Neurol. 2017;8:577.
53. Bjornevik K., Cortese M., Healy, B.C., Kuhle J., Mina M.J., Leng Y., Elledge S.J., Niebuhr D.W., Scher A.I., Munger K.L., Ascherio A. Longitudinal analysis reveals high prevalence of Epstein-Barr virus associated with multiple sclerosis. Science. 2022;375(6578):296–301.
54. Matell H., Lycke J., Svenningsson A., Holmén C., Khademi M., Hillert J., Olsson T., Piehl F. Age-dependent effects on the treatment response of natalizumab in MS patients. Mult. Scler. 2015;21(1):48–56.
55. Gelibter S., Saraceno L., Pirro F., Susani E.L., Protti A. As time goes by: Treatment challenges in elderly people with multiple sclerosis. J. Neuroimmunol. 2024;391:578368.
56. Muñoz J.S., Santiago A.D., Escudero J.C., Merino J.A.G. Case report: Primary cytomegalovirus infection in a patient with late onset multiple sclerosis treated with dimethyl fumarate. Front. Neurol. 2024;15:1363876.
57. Oudrer N. Multiple sclerosis in elderly patients: When we can stopped treatment? Mult. Scler. Relat. Disord. 2023;80:105181.
58. Skulachev V.P., Anisimov V.N., Antonenko Y.N., et al. An attempt to prevent senescence: a mitochondrial approach. Biochim. Biophys. Acta (BBA)-Bioenergetics. 2009;1787(5):437–461.
59. Zielonka J., Joseph J., Sikora A., Hardy M., Ouari O., Vasquez-Vivar J., Cheng G., Lopez M., Kalyanaraman B. Mitochondria-targeted triphenylphosphonium-based compounds: syntheses, mechanisms of action, and therapeutic and diagnostic applications. Chem. Rev. 2017;117(15):10043–10120.
60. Lin M.M., Liu N., Qin Z.H., Wang Y. Mitochondrial-derived damage-associated molecular patterns amplify neuroinflammation in neurodegenerative diseases. Acta Pharmacol. Sin. 2022;43(10):2439–2447.
61. Sanabria-Castro A., Alape-Girón A., FloresDíaz M., Echeverri-McCandless A., Parajeles-Vindas A. Oxidative stress involvement in the molecular pathogenesis and progression of multiple sclerosis: a literature review. Rev. Neurosci. 2024;35(3):355–371.
62. Sutter P.A., McKenna M.G., Imitola J., Pijewski R.S., Crocker S.J. Therapeutic opportunities for targeting cellular senescence in progressive multiple sclerosis. Curr. Opin. Pharmacol. 2022;63:102184.
63. Ghosh A., Chandran K., Kalivendi S.V., Joseph J., Antholine W.E., Hillard C.J., Kanthasamy A.,Kanthasamy A., Kalyanaraman B. Neuroprotection by a mitochondria-targeted drug in a Parkinson’s Disease model. Free Radical Biol. Med. 2010;49:1674−1684.
Рецензия
Для цитирования:
Фетисова Е.К., Воробьева Н.В., Мунтян М.С. Рассеянный склероз. Некоторые особенности патологии и возможные пути терапии. Часть 2. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2024;79(4):269-279. https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-79-4-1
For citation:
Fetisova E.K., Vorobjeva N.V., Muntyan M.S. Multiple sclerosis. Some features of pathology and prospects for therapy. Part 2. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya. 2024;79(4):269-279. (In Russ.) https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-79-4-1