Возрастные изменения тканевой антиоксидантной защиты у лесной мышовки (Sicista betulina, Rodentia) на северной периферии ареала обитания
https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-80-2-2
Аннотация
Проведено исследование уровня тканевых антиоксидантов у молодых и взрослых (зимовавших) особей зимоспящего вида – лесной мышовки (Sicista betulina Pallas, 1779), обитающей вблизи северной границы ареала распространения (Республика Карелия). Показана гетерохронность возрастных изменений показателей антиоксидантной системы: активность каталазы в почках снижалась, а в сердце, напротив, увеличивалась с возрастом; у взрослых особей лесной мышовки активность супероксиддисмутазы в почках, сердечной и скелетной мышце выше, чем у молодых животных. У молодых особей отмечен более низкий уровень низкомолекулярных антиоксидантов – восстановленного глутатиона (почки и сердце) и α-токоферола (сердце и скелетная мышца) – по сравнению с зимовавшими животными, что, вероятно, связано не только с активным ростом и высокой степенью подвижности молодых особей в период расселения, но и с напряженностью физиологических систем в связи с обитанием в условиях Севера и подготовкой к зимней спячке. Обнаружены более высокие уровни восстановленного глутатиона и α-токоферола в сердце зимовавших особей лесной мышовки по сравнению с другими зимовавшими представителями отряда Rodentia, обитающими в Республике Карелия, что подчеркивает важную роль низкомолекулярных антиоксидантов в защите тканей от окислительных повреждений у этого вида.
При поддержке: Авторы выражают признательность сотрудникам лаборатории экологической физиологии животных Института биологии КарНЦ РАН за помощь в проведении исследования. Финансовое обеспечение исследований осуществлялось из средств федерального бюджета на выполнение государственного задания КарНЦ РАН (FMEN-2022-0003) и ИБВВ (№124032500016-4).
Об авторах
Е. П. Антонова
Институт биологии, Федеральный исследовательский центр «Карельский научный центр Российской академии наук»; Петрозаводский государственный университет
Россия
Россия
Антонова Екатерина Петровна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаборатории экологической физиологии животных Института биологии Карельского научного центра РАН
Тел.: 8-8142-57-31-07
185910, г. Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
85910, г. Петрозаводск, пр. Ленина, д. 33
В. А. Илюха
Петрозаводский государственный университет; Институт биологии внутренних вод имени И.Д. Папанина, Российская академия наук
Россия
Россия
Илюха Виктор Александрович – доктор биол. наук, ст. науч. сотр. Института биологии внутренних вод имени И.Д. Папанина Российской академии наук
Тел.: 8-48547-24-349
85910, г. Петрозаводск, пр. Ленина, д. 33
А. Е. Якимова
Институт биологии, Федеральный исследовательский центр «Карельский научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
Якимова Алина Евгеньевна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаборатории зоологии
Тел.: 8-8142-57-31-40
185910, г. Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
И. В. Баишникова
Институт биологии, Федеральный исследовательский центр «Карельский научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
Баишникова Ирина Валерьевна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаборатории экологической физиологии животных
Тел.: 8-8142-57-31-07
185910, г. Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
Т. Н. Ильина
Институт биологии, Федеральный исследовательский центр «Карельский научный центр Российской академии наук»
Россия
Россия
Ильина Татьяна Николаевна – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаборатории экологической физиологии животных
Тел.: 8-8142-57-31-07
185910, г. Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
Список литературы
1. Sohal R.S., Orr W.C. The redox stress hypothesis of aging. Free. Radic. Biol. Med. 2012;52(3):539–555.
2. Yang J., Luo J., Tian X., Zhao Y., Li Y., Wu X. Progress in understanding oxidative stress, aging, and aging-related diseases. Antioxidants (Basel). 2024;13(4):394.
3. Hindle A.G., Lawler J.M., Campbell K.L., et al. Muscle aging and oxidative stress in wild-caught shrews. Comp. Biochem. Physiol., Part B: Biochem. Mol. Biol. 2010;155(4):427–434.
4. Andziak B., O’Connor T.P., Buffenstein R. Antioxidants do not explain the disparate longevity between mice and the longest-living rodent, the naked mole-rat. Mech. Ageing Dev. 2005;126(11):1206–1212.
5. Conde-Perezprina J.C., Luna-Lopez A., Gonzalez-Puertos V.Y., Zenteno-Savín T., León-Galván M.Á., Königsberg M. DNA MMR systems, microsatellite instability and antioxidant activity variations in two species of wild bats: Myotis velifer and Desmodus rotundus, as possible factors associated with longevity. Age. 2012;34(6):1473–1492.
6. Klichkhanov N.K., Nikitina E.R., Shihamirova Z.M., Astaeva M.D., Chalabov S.I., Krivchenko A.I. Erythrocytes of little ground squirrels undergo reversible oxidative stress during arousal from hibernation. Front. Physiol. 2021;12:730657.
7. Haase C.G., Fuller N.W., Hranac C.R., Hayman D.T.S., Olson S.H., Plowright R.K., McGuire L.P. Bats are not squirrels: revisiting the cost of cooling in hibernating mammals. J. Therm. Biol. 2019;81:185–193.
8. Ивантер Э.В. К популяционной экологии лесной мышовки (Sicista betulina Pall.) на северном пределе ареала. Сообщение II. Размножение, экологическая структура популяции, динамика численности. Принципы экологии. 2021;3(41):25–41.
9. Johansen K., Krog J. Diurnal body temperature variations and hibernation in the birch mouse, Sicista betulina. Am. J. Physiol. 1959;196(6):1200–1204.
10. Orr A.L., Lohse L.A., Drew K.L., Hermes-Lima M. Physiological oxidative stress after arousal from hibernation in Arctic ground squirrel. Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol. 2009;153(2):213–221.
11. Ivanter E.V. The reproductive ecology of the bank vole Myodes (Clethrionomys) Glareolus Schreb. In north periphery of its areal: I. sex cycles, course, dates, and intensive reproduction. Biol. Bull. 2020;47(5):535–547.
12. Okamoto I., Kayano T., Hanaya T., Arai S., Ikeda M., Kurimoto M. Up-regulation of an extracellular superoxide dismutase-like activity in hibernating hamsters subjected to oxidative stress in mid- to late arousal from torpor. Comp. Biochem. Physiol. C Toxicol. Pharmacol. 2006;144(1):47–56.
13. James R.S., Staples J.F., Brown J.C., Tessier S.N., Storey K.B. The effects of hibernation on the contractile and biochemical properties of skeletal muscles in the thirteenlined ground squirrel, Ictidomys tridecemlineatus. J. Exp. Biol. 2013;216(Pt. 14):2587–2594.
14. Yin Q., Ge H., Liao C.C., Liu D., Zhang S., Pan Y. Antioxidant defenses in the brains of bats during hibernation. PLoS One. 2016;11(3):e0152135.
15. Ilyina T.N., Baishnikova I.V., Belkin V.V. Retinol and α-tocopherol content in the liver and skeletal muscle of bats (Chiroptera) during hibernation and summer activity. J. Evol. Biochem. Phys. 2022;58(6):1697–1707.
16. Misra H.P., Fridovich I. The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J. Biol. Chem. 1972;247(10):3170–3175.
17. Beers R.F., Sizer I.N. A spectral method for measuring the breakdown of hydrogen peroxide by catalase. J. Biol. Chem. 1952;195(1):133–140.
18. Lowry O.H., Rosenbrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951;193(1):265–275.
19. Sedlak J., Lindsay R.H. Estimation of total, protein-bound and non-protein sulfhydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Anal. Biochem. 1968;25:192–205.
20. Скурихин В.Н., Двинская Л.М. Определение α-токоферола и ретинола в плазме крови сельскохозяйственных животных методом микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии. Сельскохозяйственная биология. 1989;4:127–129.
21. Ji L.L., Dillon D., Wu E. Alteration of antioxidant enzymes with aging in rat skeletal muscle and liver. Am. J. Physiol. 1990;258(4 Pt. 2):R918–R923.
22. Andziak B., O’Connor T.P., Qi W. et al. High oxidative damage levels in the longest living rodent, the naked mole-rat. Aging Cell. 2006;5(6):463–471.
23. Saldmann F., Viltard M., Leroy C., Friedlander G. The naked mole rat: a unique example of positive oxidative stress. Oxid. Med. Cell. Longev. 2019:4502819.
24. Aoyama K., Nakaki T. Glutathione in cellular redox homeostasis: association with the excitatory amino acid carrier 1 (EAAC1). Molecules. 2015;20(5):8742–8758.
25. Antonova E.P., Kalinina S.N., Yakimova A.E. et al. Antioxidant defenses in tissues of four species of Arvicolinae (Rodentia, Cricetidae). Biol. Bull. Russ. Acad. Sci. 2023;50(Suppl. 3):S428–S435.
26. Matsuo M., Gomi F., Dooley M.M. Age-related alterations in antioxidant capacity and lipid peroxidation in brain, liver, and lung homogenates of normal and vitamin E-deficient rats. Mech. Ageing Dev. 1992;64(3):273–292.
27. Ilyina T.N., Baishnikova I.V., Yakimova A.E., Zaitseva I.A. On the concentration of vitamins A and E in the tissues of the bank vole (Myodes (Clethrionomys) glareolus) and common shrew (Sorex araneus) inhabiting Karelia. Adv. Gerontol. 2024;14(1):21–27.
28. van Breukelen F., Martin S.L. The hibernation continuum: physiological and molecular aspects of metabolic plasticity in mammals. Physiology (Bethesda). 2015;30(4):273–281.
29. Антонова Е.П., Сергина С.Н., Илюха В.А., Якимова А.Е. Характеристика видовых и возрастных особенностей лактатдегидрогеназной системы в тканях грызунов (Mammalia: Rodentia). Труды Карельского научного центра РАН. 2018;4:3–12.
30. Anegawa D., Sugiura Y., Matsuoka Y., Sone M., Shichiri M., Otsuka R., Ishida N., Yamada K.I., Suematsu M., Miura M., Yamaguchi Y. Hepatic resistance to cold ferroptosis in a mammalian hibernator Syrian hamster depends on effective storage of diet-derived α-tocopherol. Commun. Biol. 2021;4(1):796.
31. Klichkhanov N.K., Ismailova Z.G., Astaeva M.D., Chalabov Sh.I. Effects of vitamins C and E on free radical processes in the blood of rats in acute moderate hypothermia. Biol. Bull. Russ. Acad. Sci. 2019;46:536–543.
32. McNab B.K. An analysis of the factors that influence the level and scaling of mammalian BMR. Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol. 2008;151(1):5–28.
33. Кухарева А.В. К экологии лесной мышовки (Sicista betulina Pall) на севере. Современные проблемы науки и образования. 2007;4:1–14.
34. Austad S.N. Diverse aging rates in metazoans: targets for functional genomics. Mech. Ageing Dev. 2005;126(1):43–49.
35. Lyman C.P., O’Brien R.C., Greene G.C., Papafrangos E.D. Hibernation and longevity in the Turkish hamster Mesocricetus brandti. Science. 1981;212(4495):668–670.
36. Brunet-Rossinni A.K., Austad S.N. Ageing studies on bats: a review. Biogerontology. 2004;5(4):211–222.
Рецензия
Для цитирования:
Антонова Е.П., Илюха В.А., Якимова А.Е., Баишникова И.В., Ильина Т.Н. Возрастные изменения тканевой антиоксидантной защиты у лесной мышовки (Sicista betulina, Rodentia) на северной периферии ареала обитания. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2025;80(2):80-88. https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-80-2-2
For citation:
Antonova E.P., Ilyukha V.A., Yakimova A.E., Baishnikova I.V., Ilyina T.N. Age-related changes in the tissue antioxidant system of the northern birch mouse (Sicista betulina, Rodentia) at the northern periphery of its habitat area. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya. 2025;80(2):80-88. (In Russ.) https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-80-2-2
Просмотров:
10
Послать статью по эл. почте 