Cодержание ретинола и α-токоферола у представителей семейства Cervidae (Mammalia, Cetartiodactyla) на северо-западе России

Содержание витаминов в организме является одним из важнейших показателей, который отражает уровень питания крупных копытных млекопитающих, обитающих на северной периферии ареала в условиях ограниченного доступа кормовых ресурсов в холодный период года. В данной работе исследовали уровень ретинола (витамин А) и α-токоферола (витамин Е) в органах и тканях диких лосей (Alces alces) разного возраста и пола, а также содержащихся в полувольных условиях европейского благородного оленя (Cervus elaphus) и марала (C. e. sibiricus) на северо-западе России (Республика Карелия и Ленинградская область). Биологический материал был получен от животных, добытых в результате легальной охоты в период с октября по январь. Уровни витаминов у исследованных животных в целом согласовались со значениями, установленными для оленьих, обитающих в других регионах мира, в том числе и с более мягким климатом. Относительно низкое содержание витаминов, выявленное у представителей рода Cervus, требует дополнительного изучения. У лосей не было обнаружено половых и возрастных различий в содержании витаминов А и Е, за исключением более низкого уровня α-токоферола в почках взрослых самок по сравнению с молодыми. Беременные самки лося отличались сравнительно низким содержанием ретинола в исследованных органах и тканях. Обнаружено влияние района, в котором были добыты лоси, на содержание ретинола в печени и α-токоферола в сердце, что может быть связано с природно-климатческими особенностями районов исследования, которые определяют состав фитоценозов и кормовую ценность растений. Полученные результаты могут быть использованы при оценке состояния и разработке плана управления популяциями крупных копытных.

1. Панченко Д.В., Данилов П.И., Тирронен К.Ф. Состояние и использование популяций представителей семейства Оленьи (Cervidae) в Республике Карелия. Труды КарНЦ РАН. 2018;(4):105–114.

2. Jensen W.F., Rea R.V., Penner C.E., et al. A review of circumpolar moose populations with emphasis on Eurasian moose distributions and densities. Alces. 2020;56:63–78.

3. Панченко Д.В., Серова Л.М., Данилов П.И., Шакун В.В., Козорез А.И. О динамике числен- ности лося на северной периферии ареала и в зоне экологического оптимума. Принципы экологии. 2020;(2(36)):60–70.

4. Белкин В.В., Панченко Д.В., Федоров Ф.В. Эко­логические последствия полувольного содержания ко­пытных на Европейском Севере России. Вестник Охо­товедения. 2018;15(4):251–255.

5. Parker K.L., Barboza P.S., Gillingham M.P. Nutri­tion integrates environmental responses of ungulates. Funct. Ecol. 2009;23(1):57–69.

6. Cook R.C., Cook J.G., Mech L.D. Nutritional con­dition of northern Yellowstone elk. J. Mammal. 2004;85(4):714–722.

7. Rodgers A.R., Baskin L., Herfindal I., Jensen W., Kuzyk G., Pekins P., Rolandsen C.M. Moose Alces alces (Linnaeus, 1758). Deer of the World. Ecology, Conservation and Management. Eds. M. Melletti and S. Focardi. Springer Cham; 2025: 753–788.

8. Green A.S., Fascetti A.J. Meeting the vitamin A re­quirement: the efficacy and importance of β-carotene in ani­mal species. Sci. World J. 2016;2016(1):7393620.

9. Zingg J.M. Vitamin E: regulatory role on signal transduction. IUBMB Life. 2019;71(4):456–478.

10. Szewczyk K., Chojnacka A., Górnicka M. Toco­pherols and tocotrienols – bioactive dietary compounds; what is certain, what is doubt? Int. J. Mol. Sci. 2021;22(12):6222.

11. Ballet N., Robert J.C., Williams P.E.V. Vitamins in Forages. Forage evaluation in ruminant nutrition. Eds. D.J. Givens, E. Owen, R.F.E. Axford, and H.M. Omed. CAB In­ternational; 2000: 399–432.

12. Lashkari S., Panah F.M., Weisbjerg M.R., Jensen S.K. Formation of RRR-α-tocopherol in rumen and intestinal digestibility of tocopherols in dairy cows. Anim. Nutr. 2023;9(15):350–363.

13. Иванов А.А. Регуляция метаболизма ретинои­дов у молочных коров за счет перорального назначения биоэлементов. Известия ТСХА. 2007;1:122–132.

14. Traber M.G. Mechanisms for the prevention of vita­min E excess. J. Lipid Res. 2013;54(9):2295–2306.

15. Meacci E., Chirco A., Garcia-Gil M. Potential vita­min E signaling mediators in skeletal muscle. Antioxidants. 2024;13(11):1383.

16. Stephenson T., Crouse J., Hundertmark K., Keech M. Vitamin E, selenium, and reproductive losses in Alaskan moose. Alces. 2001;37(1):201–206.

17. Sampels S., Wiklund E., Pickova J. Influence of diet on fatty acids and tocopherols in M. Longissimus Dorsi from reindeer. Lipids. 2006;41(5):463–472.

18. Rodríguez-Estival J., Taggart M.A., Mateo R. Alter­ations in vitamin A and E levels in liver and testis of wild un­gulates from a lead mining area. Arch. Environ. Contam. Tox­icol. 2011;60(2):361–371.

19. Dannenberger D., Nuernberg G., Nuernberg K., Hagemann E. The effects of gender, age and region on mac­ro- and micronutrient contents and fatty acid profiles in the muscles of roe deer and wild boar in Mecklenburg-Western Pomerania (Germany). Meat Sci. 2013;94(1):39–46.

20. Soriano A., Sánchez-García C. Nutritional composi­tion of game meat from wild species harvested in Europe. Meat and Nutrition. Ed. C.L. Ranabhat. Intech open; 2021:77–100.

21. Kalinina S.N., Ilyukha V.A., Komov V.T., Zaitse­va I.A., Baishnikova I.V., Panchenko D.V., Antonova E.P. The mercury and low molecular-weight antioxidants levels in ungulates of the Republic of Karelia. J. Evol. Biochem. Physiol. 2024;60(2):515–525.

22. Клевезаль Г.А. Принципы и методы определения возраста млекопитающих. М.: Т-во науч. изд. КМК; 2007. 283 с.

23. Senoo H., Wake K., Wold H.L., Higashi N., Imai K., Moskaug J.Ø., Kojima N., Miura M., Sato T., Sato M., Roos N., Berg T., Norum K.R., Blomhoff R. Decreased ca­pacity for vitamin A storage in hepatic stellate cells for arctic animals. Comp. Hepatol. 2004;3(Suppl. 1):S18.

24. Kuhnlein H.V., Barthet V., Farren A., Falahi E., Leggee D., Receveur O., Berti P. Vitamins A, D, and E in Canadian Arctic traditional food and adult diets. J. Food Comp. Anal. 2006;19(6–7):495–506.

25. Hassan A.A., Sandanger T.M., Brustad M. Level of selected nutrients in meat, liver, tallow and bone marrow from semi-domesticated reindeer (Rangifer t. tarandus L.). Int. J. Circumpolar. Health. 2012;19(71):17997.

26. Кайзер А.А., Беглецов О.А., Марцёха Е.В., Кай­зер Г.А. Качественный состав мяса лося (Alces a. pfizen­mayeri Zukowski) Таймырской популяции. Достижения науки и техники АПК. 2013;12:72–73.

27. Верещагин Н.К., Русаков О.С. Копытные Севе­ро-Запада СССР. Л.: Наука; 1979. 309 с.

28. Формозов А.Н. Снежный покров в жизни млеко­питающих и птиц. М.: Изд-во МГУ; 1990. 286 с.

29. Данилкин А.А. Оленьи = (Cervidae): (Cervidae). М.: ГЕОС; 1999. 552 с.

30. Наумова Е.И., Жарова Г.К., Чистова Т.Ю., Да­нилкин А.А. Редукция растительных волокон в пищева­рительном тракте лося и благородного оленя. Известия РАН. Сер. Биол. 2012;(5):521–528.

31. Hofmann R.R., Nygren K. Morphophysiological specialization and adaptation of the moose digestive system. Alces. 1992;(Suppl. 1):91–100.

32. Анненкова О.М. Особенности морфологии и ва­скуляризации многокамерного желудка оленя северного (Rangifer tarandus) и лося европейского (Alces alces). Авто­реф. дис. … канд. вет. наук. СПб.: ФГОУ ВПО «Санкт- Петербургская государственная академия ветеринарной медицины»; 2007. 185 с.

33. Lock A.L., Harvatine K.J., Drackley J.K., Bau­man D.E. Concepts in fat and fatty acid digestion in rumi­nants. Proc. Intermountain Nutr. Conf. 2006; 85–100.

34. Lashkari S., Panah F.M., Weisbjerg M.R., Jensen S.K. Formation of RRR-α-tocopherol in rumen and intestinal digestibility of tocopherols in dairy cows. Anim. Nutr. 2023;15:350–363.

35. Hofmann R. R., Nygren K. Ruminal mucosa as in­dicator of nutritional status in wild and captive moose. Alces. 1992;(Suppl.1):77–83.

36. Кошурникова М.А., Домский И.А., Берези­на Ю.А., Экономов А.В. Биохимические показатели крови лосей (Alces alces Linnaeus, 1758) из разных по­ловозрастных групп. Сельскохозяйственная биология. 2023;58(2):288–301.

37. Zhao L., Zou X., Feng Z., Luo C., Liu J., Li H., Chang L., Wang H., Li Y., Long J., Gao F., Liu J. Evidence for association of mitochondrial metabolism alteration with li­pid accumulation in aging rats. Exp. Gerontol. 2014;56:3–12.

38. Lorenzo J.M., Maggiolino A., Gallego L., Pareiro M., Perez Serano M., Dominguez R., Diaz A., Lan­dete-Castillejos T., De Palo P. Effect of age on nutritional properties of Iberian wild red deer meat. J. Sci. Food Agric. 2019;99(4):1561–1567.

39. Volpelli L.A., Valusso R., Morgante M., Pittia P., Piasentier E. Meat quality in male fallow deer (Dama dama): Effects of age and supplementary feeding. Meat Sci. 2003;65(1):555–562.

40. Carazo A., Macáková K., Matoušová K., Krčmová L.K., Protti M., Mladěnka P. Vitamin A update: forms, sources, kinetics, detection, function, deficiency, therapeutic use and toxicity. Nutrients. 2021;13(5):1703.

41. Schweigert F.J. Research note: changes in the con­centration of ß-carotene, a-tocopherol and retinol in the bo­vine corpus luteum during the ovarian cycle. Arch. Anim. Nutr. 2003;57(4):307–310.

42. Sklan D. Carotene cleavage activity in the corpus luteum of cattle. Int. J. Vitam. Nutr. Res. 1983;53(1):23–26.

43. Левин Э.Д., Репях С.М. Переработка древесной зелени. М.: Лесн. пром-сть; 1984. 120 с.

44. Посметьев В.И., Макаренко А.В. Оценка целе­сообразности использования древесной зелени в народ­ном хозяйстве. Воронежский научно-технический вест­ник. 2015;4(14):52–65.

45. Дарменова А.Г., Юсупов С.Р., Зухрабов М.Г. Состояние А-витаминного обмена и его влияние на воспроизводительную функцию коров. Известия Орен­бургского государственного аграрного университета. 2017;5(67):247–248.

46. Wallert M., Ziegler M., Wang X., Maluenda A., Xu X., Yap M.L., Witt R., Giles C., Kluge S., Hortmann M., Zhang J., Meikle P., Lorkowski S., Peter K. α-Tocopherol preserves cardiac function by reducing oxidative stress and inflammation in ischemia/reperfusion injury. Redox Biol. 2019;26:101292.

47. Hassan A.A., Sandanger T.M., Brustad M. Selected Vitamins and essential elements in meat from semi-domesti­cated reindeer (Rangifer tarandus tarandus L.) in mid- and northern Norway: geographical variations and effect of ani­mal population density. Nutrients. 2012;4(7):724–739.

48. Лукина Н.В., Орлова М.А., Бахмет О.Н., Тихо­нова Е.В., Тебенькова Д.Н., Казакова А.И., Кры­шень А.М., Горнов А.В., Смирнов В.Э., Шашков М.П., Ершов В.В., Князева С.В. Влияние растительности на характеристики лесных почв Республики Карелия. По­чвоведение. 2019;(7):827–842.

49. Данилов П.И. Охотничьи звери Карелии: эколо­гия, ресурсы, управление, охрана. М.: Наука; 2005. 340 с.

50. Курхинен Ю.П., Данилов П.И., Ивантер Э.В. Млекопитающие Восточной Фенноскандии в условиях ан­тропогенной трансформации таежных экосистем. М.: Наука; 2006. 208 с.

51. Шакун В.В., Панченко Д.В., Соловей И.А., Крищук И.А., Велигуров П., Машков Е., Ларченко А. Роль Оленьих (Cervidae) в формировании сосновых на­саждений Европейской части южной тайги. Norwegian Journal of Development of the International Science. 2020;42(2):13–19.

52. Дымова О.В., Головко Т.К. 2019. Фотосинтети­ческие пигменты в растениях природной флоры таеж­ной зоны европейского северо-востока России. Физио­логия растений. 2019;66(3):198–206.

53. Ghosh U.K., Hossain M.S., Islam M.N., Khan M.A.R. Role of tocopherol in conferring abiotic stress tolerance in plants. Antioxidant Defense in Plants. Eds. T. Aftab and K.R. Hakeem. Singapore: Springer; 2022:215–233.

54. Vikøren T., Kristoffersen A.B., Lierhagen S., Han­deland K.A. Comparative study of hepatic trace element lev­els in wild moose, roe deer, and reindeer from Norway. J. Wildl. Dis. 2011;47(3):661–672.

55. Stubsjøen T., Sæther B.-E., Solberg E.J., Heim M., Rolandsen C.M. Moose (Alces alces) survival in three populations in northern Norway. Can. J. Zool. 2000;78(10):1822–1830.