Preview

Вестник Московского университета. Серия 16. Биология

Расширенный поиск

Влияние микропластика на экспрессию генов и микрофлору в толстой кишке мышей в норме и при остром колите

https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-81-1-7

Аннотация

В связи с растущим загрязнением окружающей среды микропластиком (МП) актуален вопрос о его влиянии на здоровье человека. Предполагается, что МП способствует развитию воспалительных заболеваний кишечника, поэтому мы оценили влияние длительного потребления МП на экспрессию генов, связанных с барьерной функцией толстой кишки, и состав просветной микрофлоры у здоровых мышей и животных с острым колитом. Воздействие МП моделировали заменой питьевой воды на суспензию 10 мг/л частиц полистирола диаметром 5 мкм в течение 6 нед. Для моделирования острого колита с 36-х по 40-е сут эксперимента в поилки добавляли декстрансульфат натрия до конечной концентрации 1%. У здоровых мышей МП вызывал повышение экспрессии мРНК трансмембранного муцина Muc3, белков плотных контактов Cldn4, Cldn7, проапоптического фактора Bax и антиапоптотического фактора Bcl2, что в целом указывает на активацию синтетических процессов в эпителии кишечника и является адаптивной реакцией. В составе микрофлоры наблюдалось увеличение представленности рода Aestuariispira. При колите на фоне потребления МП по сравнению с колитом без МП наблюдалась более низкая экспрессия мРНК Cldn4, Bax, более высокая экспрессия Muc13 и сниженное отношение Bax/Bcl2, отличалось содержание бактерий 24 родов. 

Об авторах

Н. А. Золотова
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Россия

Золотова Наталья Александровна – канд. биол. наук, вед. науч. сотр. лаб. иммуноморфологии воспаления

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Тел.: 8-499-120-80-65



М. В. Кириллова
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Россия

Кириллова Мария Валерьевна – мл. науч. сотр. лаб. иммуноморфологии воспаления

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3

 Тел.: 8-499-120-80-65



И. С. Цветков
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Россия

Цветков Иван Сергеевич – канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаб. иммуноморфологии воспаления 

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Тел.: 8-499-120-80-65



Д. Ш. Джалилова
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Россия

Джалилова Джулия Шавкатовна – канд. биол. наук, вед. науч. сотр. лаб. иммуноморфологии
воспаления

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Тел.: 8-499-120-80-65



Л. В. Озерецкая
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского
Россия

Озерецкая Любовь Владимировна – лаб.-иссл. лаб. иммуноморфологии воспаления

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Тел.: 8-499-120-80-65



М. Т. Добрынина
Кафедра клеточной биологии и гистологии, биологический факультет, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Россия

обрынина Мариэтта Тиграновна – канд. биол. наук, доцент кафедры клеточной биологии и гистологии биологического факультета

119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12

Тел.: 8-495-939-17-94



О. В. Макарова
Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына, Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского; Кафедра клеточной биологии и гистологии, биологический факультет, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Россия

Макарова Ольга Васильевна – докт. мед. наук, проф., гл. науч. сотр., зав. лаб. иммуноморфологии воспаления; проф. кафедры клеточной биологии и гистологии биологического факультета

117418, г. Москва, ул. Цюрупы, д. 3; 119234, г. Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12

Тел.: 8-499-120-80-65



Список литературы

1. Pironti C., Ricciardi M., Motta O., Miele Y., Proto A., Montano L. Microplastics in the environment: Intake through the food web, human exposure and toxicological effects. Toxics. 2021;9(9):224. DOI: 10.3390/toxics9090224

2. Schwabl P., Köppel S., Königshofer P., Bucsics T., Trauner M., Reiberger T., Liebmann B. Detection of various microplastics in human stool: A prospective case series. Ann. Intern. Med. 2019;171(7):453–457. DOI: 10.7326/M19-0618

3. Yan Z., Liu Y., Zhang T., Zhang F., Ren H., Zhang Y. Analysis of microplastics in human feces reveals a correlation between fecal microplastics and inflammatory bowel disease status. Environ. Sci. Technol. 2022;56(1):414–421. DOI: 10.1021/acs.est.1c03924

4. Santini S., Exposito N., Sierra J., Cincinelli A., Rovira J. Set up and validation of a method to analyse microplastics in stool and small intestine samples. MethodsX. 2024;12:102777. DOI: 10.1016/j.mex.2024.102777

5. Ho Y.W., Lim J.Y., Yeoh Y.K., Chiou J.C., Zhu Y., Lai K.P., Li L., Chan P.K.S., Fang J.K. Preliminary findings of the high quantity of microplastics in faeces of Hong Kong residents. Toxics. 2022;10(8):414. DOI: 10.3390/toxics10080414

6. Cetin M., Demirkaya Miloglu F., Kilic Baygutalp N., et al. Higher number of microplastics in tumoral colon tissues from patients with colorectal adenocarcinoma. Environ. Chem. Lett. 2023;21(2):639–646. DOI: 10.1007/s10311-022-01560-4

7. Molodecky N.A., Soon I.S., Rabi D.M., Ghali W.A., Ferris M., Chernoff G., Benchimol E.I., Panaccione R., Ghosh S., Barkema H.W., Kaplan G.G. Increasing incidence and prevalence of the inflammatory bowel diseases with time, based on systematic review. Gastroenterology. 2012;142(1):46–54.e42; quiz e30. DOI: 10.1053/j.gastro.2011.10.001

8. Zolotova N., Dzhalilova D., Tsvetkov I., Silina M., Fokichev N., Makarova O. Microplastic effects on mouse colon in normal and colitis conditions: A literature review. PeerJ. 2025;13:e18880. DOI: 10.7717/peerj.18880

9. Zolotova N., Dzhalilova D., Tsvetkov I., Makarova O. Influence of microplastics on morphological manifestations of experimental acute colitis. Toxics. 2023;11(9):730. DOI: 10.3390/toxics11090730

10. Schwarzfischer M., Niechcial A., Lee S.S., et al. Ingested nano- and microsized polystyrene particles surpass the intestinal barrier and accumulate in the body. NanoImpact. 2022;25:100374. DOI: 10.1016/j.impact.2021.100374

11. Zheng H., Wang J., Wei X., Chang L., Liu S. Proinflammatory properties and lipid disturbance of polystyrene microplastics in the livers of mice with acute colitis. Sci. Total Environ. 2021;750:143085. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2020.143085

12. Liu S., Li H., Wang J., Wu B., Guo X. Polystyrene microplastics aggravate inflammatory damage in mice with intestinal immune imbalance. Sci. Total Environ. 2022;833:155198. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2022.155198

13. Luo T., Wang D., Zhao Y., Li X., Yang G., Jin Y. Polystyrene microplastics exacerbate experimental colitis in mice tightly associated with the occurrence of hepatic inflammation. Sci. Total Environ. 2022;844:156884. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2022.156884

14. Xie S., Zhang R., Li Z., Liu C., Chen Y., Yu Q. Microplastics perturb colonic epithelial homeostasis associated with intestinal overproliferation, exacerbating the severity of colitis. Environ. Res. 2023;217:114861. DOI: 10.1016/j.envres.2022.114861

15. Ma J., Wan Y., Song L., Wang L., Wang H., Li Y., Huang D. Polystyrene nanobeads exacerbate chronic colitis in mice involving in oxidative stress and hepatic lipid metabolism. Part. Fibre Toxicol. 2023;20(1):49. DOI: 10.1186/s12989-023-00560-8

16. Cao Z., Lu Y., Yang Q., Luo A., Gou S., Zhou L., Li H., Wang Y., Ding T. Mapping the hidden journey of microplastics: Multi-organ deposition patterns and organ-specific health risks revealed by AI-driven analysis. Innovation (Camb.). 2026;7(1):101031. DOI: 10.1016/j.xinn.2025.101031

17. Zolotova N., Silina M., Dzhalilova D., Tsvetkov I., Fokichev N., Makarova O. Influence of microplastics on manifestations of experimental chronic colitis. Toxics. 2025;13(8):701. DOI: 10.3390/toxics13080701

18. Hou B., Wang F., Liu T., Wang Z. Reproductive toxicity of polystyrene microplastics: In vivo experimental study on testicular toxicity in mice. J. Hazard Mater. 2021;405:124028. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2020.124028

19. Zou H., Qu H., Bian Y., Sun J., Wang T., Ma Y., Yuan Y., Gu J., Bian J., Liu Z. Polystyrene microplastics induce oxidative stress in mouse hepatocytes in relation to their size. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(8):7382. DOI: 10.3390/ijms24087382

20. Senathirajah K., Attwood S., Bhagwat G., Carbery M., Wilson S., Palanisami T. Estimation of the mass of microplastics ingested – A pivotal first step towards human health risk assessment. J. Hazard Mater. 2021;404(Pt. B):124004. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2020.124004

21. Song Y., Zhang J., Shen X., Yang L., Jia Y., Song F., Huang Y., Han B., Zhou S., Zhang N., Ma G. Microplastics in stools and their influencing factors among young adults from three cities in China: A multicenter cross-sectional study. Environ. Pollut. 2025;364:125168. DOI: 10.1016/j.envpol.2024.125168

22. Gupta B.K., Maher D.M., Ebeling M.C., et al. Increased expression and aberrant localization of mucin 13 in metastatic colon cancer. J. Histochem. Cytochem. 2012;60(11):822–831. DOI: 10.1369/0022155412460678

23. Choi Y.J., Park J.W., Kim J.E., Kim J.E., Lee S.J., Gong J.E., Jung Y.S., Seo S., Hwang D.Y. Novel characterization of constipation phenotypes in icr mice orally administrated with polystyrene microplastics. Int. J .Mol. Sci. 2021;22(11):5845. DOI: 10.3390/ijms22115845

24. Liang B., Zhong Y., Huang Y., et al. Underestimated health risks: polystyrene micro- and nanoplastics jointly induce intestinal barrier dysfunction by ROS-mediated epithelial cell apoptosis. Part. Fibre Toxicol. 2021;18(1):20. DOI: 10.1186/s12989-021-00414-1

25. Chen X., Zhuang J., Chen Q., Xu L., Yue X., Qiao D. Polyvinyl chloride microplastics induced gut barrier dysfunction, microbiota dysbiosis and metabolism disorder in adult mice. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2022;241:113809. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2022.113809

26. Jia R., Han J., Liu X., Li K., Lai W., Bian L., Yan J., Xi Z. Exposure to polypropylene microplastics via oral ingestion induces colonic apoptosis and intestinal barrier damage through oxidative stress and inflammation in mice. Toxics. 2023;11(2):127. DOI: 10.3390/toxics11020127

27. Shaoyong W., Jin H., Jiang X., Xu B., Liu Y., Wang Y., Jin M. Benzo [a] pyrene-loaded aged polystyrene microplastics promote colonic barrier injury via oxidative stress-mediated notch signalling. J. Hazard. Mater. 2023;457:131820. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2023.131820

28. Zeng G., Li J., Wang Y., Su J., Lu Z., Zhang F., Ding W. Polystyrene microplastic-induced oxidative stress triggers intestinal barrier dysfunction via the NF-κB/NLRP3/ IL-1β/MCLK pathway. Environ. Pollut. 2024;345:123473. DOI: 10.1016/j.envpol.2024.123473

29. Wen S., Zhao Y., Liu S., Chen Y., Yuan H., Xu H. Polystyrene microplastics exacerbated liver injury from cyclophosphamide in mice: Insight into gut microbiota. Sci. Total Environ. 2022;840:156668. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2022.156668

30. Wang L., Chen J., Zhang X., Xu M., Zhang X., Zhao W., Cui J. Effects of microplastics and tetracycline on intestinal injury in mice. Chemosphere. 2023;337:139364. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2023.139364

31. Sun H., Yang B., Zhu X., Li Q., Song E., Song Y. Oral exposure of polystyrene microplastics and doxycycline affects mice neurological function via gut microbiota disruption: The orchestrating role of fecal microbiota transplantation. J. Hazard. Mater. 2024;467:133714. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2024.133714

32. Park S.B., Jung W.H., Choi K.J., Koh B., Kim K.Y. A comparative systematic analysis of the influence of microplastics on colon cells, mouse and colon organoids. Tissue Eng. Regen. Med. 2023;20(1):49–58. DOI: 10.1007/s13770-022-00496-8

33. Mahmud F., Sarker D.B., Jocelyn J.A., Sang Q.X.A. Molecular and cellular effects of microplastics and nanoplastics: focus on inflammation and senescence. Cells. 2024;13(21):1788. DOI: 10.3390/cells13211788

34. Sheng Y.H., Lourie R., Lindén S.K., Jeffery P.L., Roche D., Tran T.V., Png C.W., Waterhouse N., Sutton P., Florin T.H., McGuckin M.A. The MUC13 cell-surface mucin protects against intestinal inflammation by inhibiting epithelial cell apoptosis. Gut. 2011;60(12):1661–1670. DOI: 10.1136/gut.2011.239194

35. Nishida M., Yoshida M., Nishiumi S., Furuse M., Azuma T. Claudin-2 regulates colorectal inflammation via myosin light chain kinase-dependent signaling. Dig. Dis. Sci. 2013;58(6):1546–1559. DOI: 10.1007/s10620-012-2535-3

36. Ahmad R., Chaturvedi R., Olivares-Villagómez D., Habib T., Asim M., Shivesh P., Polk D.B., Wilson K.T., Washington M.K., Van Kaer L., Dhawan P., Singh A.B. Targeted colonic claudin-2 expression renders resistance to epithelial injury, induces immune suppression, and protects from colitis. Mucosal. Immunol. 2014;7(6):1340–1353. DOI: 10.1038/mi.2014.21

37. Capaldo C.T. Claudin barriers on the brink: How conflicting tissue and cellular priorities Drive IBD pathogenesis. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(10):8562. DOI: 10.3390/ijms24108562

38. Ding Y., Wang K., Xu C., Hao M., Li H., Ding L. Intestinal Claudin-7 deficiency impacts the intestinal microbiota in mice with colitis. BMC Gastroenterol. 2022;22(1):24. DOI: 10.1186/s12876-022-02100-8

39. Al-Failakawi A., Al-Jarallah A., Rao M., Khan I. The role of claudins in the pathogenesis of dextran sulfate sodium-induced experimental colitis: The effects of nobiletin. Biomolecules. 2024;14(9):1122. DOI: 10.3390/biom14091122

40. Yuan H., Wen S., Zhao Y., Hu L., Xu H. Polystyrene nanoplastics exacerbated Pb-induced liver toxicity in mice. Toxicol Res. 2023;12(3):446–456. DOI: 10.1093/toxres/tfad031

41. Qiu W., Ye J., Su Y., Zhang X., Pang X., Liao J., Wang R., Zhao C., Zhang H., Hu L., Tang Z., Su R. Co-exposure to environmentally relevant concentrations of cadmium and polystyrene nanoplastics induced oxidative stress, ferroptosis and excessive mitophagy in mice kidney. Environ. Pollut. 2023;333:121947. DOI: 10.1016/j.envpol.2023.121947

42. Bai Z., Zhang Y., Cheng L., Zhou X., Wang M. Nanoplastics pose a greater effect than microplastics in enhancing mercury toxicity to marine copepods. Chemosphere. 2023;325:138371. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2023.138371

43. Zhong G., Qiao B., He Y., Liu H., Hong P., Rao G., Tang L., Tang Z., Hu L. Co-exposure of arsenic and polystyrene-nanoplastics induced kidney injury by disrupting mitochondrial homeostasis and mtROS-mediated ferritinophagy and ferroptosis. Pestic. Biochem. Physiol. 2024;201:105904. DOI: 10.1016/j.pestbp.2024.105904

44. Sun W., Yan S., Meng Z., Tian S., Jia M., Huang S., Wang Y., Zhou Z., Diao J., Zhu W. Combined ingestion of polystyrene microplastics and epoxiconazole increases health risk to mice: Based on their synergistic bioaccumulation in vivo. Environ. Int. 2022;166:107391. DOI: 10.1016/j.envint.2022.107391

45. Niu H., Yang Y., Zhou Y., et al. Differential impacts of environmentally relevant microplastics on gut barrier integrity in mice fed high-fat diet versus normal chow diet. Metabolites. 2025;15(8):557. DOI: 10.3390/metabo15080557

46. Hsu C.N., Hou C.Y., Chen Y.W., Chang-Chien G.P., Lin S.F., Tain Y.L. Maternal exposure to microplastics and high-fructose diet induces offspring hypertension via disruption of h2s signaling, gut microbiota, and metabolic networks. Antioxidants. 2026;15(2):179. DOI: 10.3390/antiox15020179

47. Park S., Park J.M., Kang C.H., Yoon J.H. Aestuariispira insulae gen. nov., sp. nov., a lipolytic bacterium isolated from a tidal flat. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2014;64(Pt. 6):1841–1846. DOI: 10.1099/ijs.0.060772-0

48. Hu B., Yu S., Shi C., Gu J., Shao Y., Chen Q., Li Y., Mezzenga R. Amyloid-polyphenol hybrid nanofilaments mitigate colitis and regulate gut microbial dysbiosis. ACS Nano. 2020;14(3):2760–2776. DOI: 10.1021/acsnano.9b09125

49. Rawle D.J., Dumenil T., Tang B., Bishop C.R., Yan K., Le T.T., Suhrbier A. Microplastic consumption induces inflammatory signatures in the colon and prolongs a viral arthritis. Sci. Total Environ. 2022;809:152212. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2021.152212

50. Yu C., Xu Y., Wei Y., Guo Y., Wang Y., Song P., Yu J. Gut microbiota and liver metabolomics reveal the potential mechanism of Lactobacillus rhamnosus GG modulating the liver toxicity caused by polystyrene microplastics in mice. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 2024;31(4):6527–6542. DOI: 10.1007/s11356-023-31564-8

51. Li B., Ding Y., Cheng X., Sheng D., Xu Z., Rong Q., Wu Y., Zhao H., Ji X., Zhang Y. Polyethylene microplastics affect the distribution of gut microbiota and inflammation development in mice. Chemosphere. 2020;244:125492. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2019.125492

52. Sun H., Chen N., Yang X., Xia Y., Wu D. Effects induced by polyethylene microplastics oral exposure on colon mucin release, inflammation, gut microflora composition and metabolism in mice. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2021;220:112340. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2021.112340

53. Zhao J., Gomes D., Jin L., Mathis S.P., Li X., Rouchka E.C., Bodduluri H., Conklin D.J., O’Toole T.E. Polystyrene bead ingestion promotes adiposity and cardiometabolic disease in mice. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2022;232:113239. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2022.113239

54. Shi C., Han X., Guo W., et al. Disturbed gut-liver axis indicating oral exposure to polystyrene microplastic potentially increases the risk of insulin resistance. Environ. Int. 2022;164:107273. DOI: 10.1016/j.envint.2022.107273

55. Chen W., Tu P., Ye X., Tang Q., Yu T., Zheng X. Cyanidin-3-O-glucoside impacts fecal discharge of polystyrene microplastics in mice: Potential role of microbiota-derived metabolites. Toxicol. Appl. Pharmacol. 2022;453:116212. DOI: 10.1016/j.taap.2022.116212

56. Djouina M., Vignal C., Dehaut A., Caboche S., Hirt N., Waxin C., Himber C., Beury D., Hot D., Dubuquoy L., Launay D., Duflos G., Body-Malapel M. Oral exposure to polyethylene microplastics alters gut morphology, immune response, and microbiota composition in mice. Environ. Res. 2022;212(Pt. B):113230. DOI: 10.1016/j.envres.2022.113230

57. Liu S., Wang Z., Xiang Q., Wu B., Lv W., Xu S. A comparative study in healthy and diabetic mice followed the exposure of polystyrene microplastics: Differential lipid metabolism and inflammation reaction. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2022;244:114031. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2022.114031

58. Xie L., Chen T., Liu J., Hou Y., Tan Q., Zhang X., Li Z., Farooq T.H., Yan W., Li Y. Intestinal flora variation reflects the short-term damage of microplastic to the intestinal tract in mice. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2022;246:114194. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2022.114194

59. Wang J., Tian H., Shi Y., Yang Y., Yu F., Cao H., Gao L., Liu M. The enhancement in toxic potency of oxidized functionalized polyethylene-microplastics in mice gut and Caco-2 cells. Sci. Total Environ. 2023;903:166057. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2023.166057

60. Lv W., Shen Y., Xu S., Wu B., Zhang Z., Liu S. Underestimated health risks: Dietary restriction magnify the intestinal barrier dysfunction and liver injury in mice induced by polystyrene microplastics. Sci. Total Environ. 2023;898:165502. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2023.165502

61. Zha H., Tang R., Li S., Zhuge A., Xia J., Lv J., Wang S., Wang K., Zhang H., Li L. Effects of partial reduction of polystyrene micro-nanoplastics on the immunity, gut microbiota and metabolome of mice. Chemosphere. 2024;349:140940. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2023.140940

62. Liang Y., Liu D., Zhan J., Liu X., Li P., Ma X., Hou H., Wang P. Polystyrene microplastics induce kidney injury via gut barrier dysfunction and C5a/C5aR pathway activation. Environ. Pollut. 2024;342:122909. DOI: 10.1016/j. envpol.2023.122909

63. Jiang L., Ye Y., Han Y., et al. Microplastics dampen the self-renewal of hematopoietic stem cells by disrupting the gut microbiota-hypoxanthine-Wnt axis. Cell Discov. 2024;10(1):35. DOI: 10.1038/s41421-024-00665-0

64. Hughes E.R., Panzetta M.E., Sharma A., Valdivia R.H. The Biology of Akkermansia. Annu. Rev. Microbiol. 2025;79(1):287–310. DOI: 10.1146/annurev-micro051524-032131

65. Belzer C., Chia L.W., Aalvink S., Chamlagain B., Piironen V., Knol J., de Vos W.M. Microbial metabolic networks at the mucus layer lead to diet-independent butyrate and vitamin b12 production by intestinal symbionts. mBio. 2017;8(5):e00770-17. DOI: 10.1128/mBio.00770-17

66. Panzetta M.E., Valdivia R.H. Akkermansia in the gastrointestinal tract as a modifier of human health. Gut Microbes. 2024;16(1):2406379. DOI: 10.1080/19490976.2024.2406379

67. Rivière A., Selak M., Lantin D., Leroy F., De Vuyst L. Bifidobacteria and butyrate-producing colon bacteria: Importance and strategies for their stimulation in the human gut. Front Microbiol. 2016;7:979. DOI: 10.3389/fmicb.2016.00979

68. Van Muijlwijk G.H., Van Mierlo G., Jansen P.W.T.C., Vermeulen M., Bleumink-Pluym N.M.C., Palm N.W., van Putten J.P.M., de Zoete M.R. Identification of Allobaculum mucolyticum as a novel human intestinal mucin degrader. Gut Microbes. 2021;13(1):1966278. DOI: 10.1080/19490976.2021.1966278

69. Sánchez A., Ríos D., Martínez M., Monedero V., Zúñiga M., Vélez D., Devesa V. Microplastic-induced alterations in the intestinal environment: Aging as a modulating factor. Toxicology. 2026;522:154427. DOI: 10.1016/j. tox.2026.154427

70. Hasegawa Y., Okamura T., Ono Y., Ichikawa T., Saijo Y., Nakanishi N., Sasano R., Hamaguchi M., Takano H., Fukui M. Oral exposure to high concentrations of polystyrene microplastics alters the intestinal environment and metabolic outcomes in mice. Front Immunol. 2024;15:1407936. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1407936


Рецензия

Для цитирования:


Золотова Н.А., Кириллова М.В., Цветков И.С., Джалилова Д.Ш., Озерецкая Л.В., Добрынина М.Т., Макарова О.В. Влияние микропластика на экспрессию генов и микрофлору в толстой кишке мышей в норме и при остром колите. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2026;81(1):48-57. https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-81-1-7

For citation:


Zolotova N.A., Kirillova M.V., Tsvetkov I.S., Dzhalilova D.Sh., Ozeretskaya L.V., Dobrynina M.T., Makarova O.V. Microplastic’s effects on gene expression and microflora of mice colon in health and acute colitis. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya. 2026;81(1):48-57. (In Russ.) https://doi.org/10.55959/MSU0137-0952-16-81-1-7

Просмотров: 266

JATS XML

ISSN 0137-0952 (Print)