СТРЕКОЗЫ И АНТРОПОГЕННОЕ ЗАСОЛЕНИЕ ВНУТРЕННИХ ВОД

Антропогенное засоление внутренних вод и его влияние на пресноводную биоту являются актуальными экологическими проблемами. Такое засоление приводит к изменениям в природной среде, нежелательным с точки зрения охраны окружающей среды и небезразличным для человека. Одним из трех наиболее важных факторов антропогенного засоления пресной воды в странах с умеренным и холодным климатом, наряду с сельскохозяйственной деятельностью и горным делом, стало широкое использование химических реагентов в борьбе с обледенением дорог. Сегодня основными компонентами этих реагентов являются хлориды Na и Ca – дешевые и легко доступные природные материалы. Их смесь с песком, используемая в практике противообледенительной обработки, обычно хранится навалом на специальных площадках под открытым небом круглый год. Воздействие атмосферных осадков делает ее источником засоления окружающих почв и вод. В 2015, 2016 и 2018 гг. регистрировали засоленность внутренних водоемов вблизи многолетнего открытого хранилища противогололедных реагентов в Калужской области. Установлен антропогенный характер засоления обследованных водоемов. Основные составляющие засоления водоемов в районе исследования – хлориды Na и Ca. Максимальный уровень засоления в изученных условиях – 4‰, степень засоления зависит от удаленности водоема от хранилища дорожной соли. Рассмотрено влияние антропогенной засоленности на стрекоз, главным образом, вида Coenagrion puella L. Обнаружено, что влияние повышенной засоленности воды проявляется лишь в замедлении развития особей с высоким уровнем флуктуирующей асимметрии, оно не оказывает воздействия на их число в популяции. Высокая соленость воды приводит только к изменению сроков лёта особей с высокой ФА. Предполагается, что стрекозы, как один из массовых объектов пресноводной биоты, очевидно, не подвержены значительному влиянию антропогенного засоления.

1. Kefford B.J., Buchwalter D., CañedoArgüelles M., Davis J., Duncan R.P., Hoffmann A., Thompson R. Salinized degraded systems or new habitats for salt-tolerant faunas? // Biol. Lett. 2016. Vol. 12. N 3. Article ID: 20151072.

2. Cañedo-Argüelles M., Kefford B.J., Piscart C., Prat N., Schäfer R.B., Schulz C.J. Salinisation of rivers: an urgent ecological issue // Environ. Pollut. 2013. Vol. 173. P. 157–167.

3. Blasius, B.J., Merritt R.W. Field and laboratory investigations on the effects of road salt (NaCl) on stream macroinvertibrate communities // Environ. Pollut. 2002. Vol. 120. N 2. P. 219– 231.

4. Hart B., Bailey P., Edwards P., Hortle K., James K., McMahon A., Meredith C., Swadling K. A review of salt sensitivity of Australian freshwater biota // Hydrobiologia. 1991. Vol. 210. N 1–2. P. 105–144.

5. Stranko S., Bourquin R., Zimmerman J., Kashiwagi M. McGinty M. Klauda R. Do road salts cause environmental impacts? Annapolis: Maryland Department of Natural Resources, 2013. 33 pp.

6. Williams D.D., Williams N.E., Cao Y. Road salt contamination of groundwater in a major metropolitan area and development of a biological index to monitor its impact // Water Res. 2000. Vol. 34. N 1. P. 127–138.

7. Corbet P.S. Dragonflies. Behavior and ecology of Odonata. Ithaca, New-York: Comstok Publ. Assoc., Cornell Univ. Press. 2004. 829 pp.

8. Rutherford J.C., Kefford B.J. Effects of salinity on stream ecosystems: improving models for macroinvertebrates. CSIRO Land and Water Technical Report 22/05. Canberra, 2005. 64 pp.

9. Millán A., Velasco J., Gutiérrez-Cánovas C., Arribas P., Picazo F., Sánchez-Fernández D. Abellán P. Mediterranean saline streams in southeast Spain: What do we know? // J. Arid. Environ. 2011. Vol. 75. N 12. P. 1352–1359.

10. Zinchenko T.D., Golovatyuk L.V. Salinity tolerance of macroinvertebrates in stream waters (review) // Arid Ecosyst. 2013. Vol. 3. N 3. P. 113–121.

11. Catlin P.M. Dragonflies (Odonata) emerging from brackish pools in saltmarshes of Gaspé, Quebec // Can. Field-Nat. 2009. Vol. 123. N 2. Р. 176–177.

12. Hart E.A., Lovvorn J.R. Patterns of macroinvertebrate abundance in inland saline wetlands: a trophic analysis // Hydrobiologia. 2005. Vol. 541. N 1. P. 45–54.

13. Kefford B.J., Zalizniak L., Nugegoda D. Growth of the damselfly Ischnura heterosticta is better in saline water than freshwater // Environ. Pollut. 2006. Vol. 141. N 3. P. 409–419.

14. Herbst D.B., Medhurst R.B., Roberts. S.W., Jellison R. Substratum associations аnd depth distribution of benthic invertebrates in saline Walker Lake, Nevada, USA // Hydrobiologia. 2013. Vol. 700. N 1. P. 61–72.

15. Conrad K.F., Willson K.H., Whitfield K.,.Harvey I.F, Thomas C.J., Thomas N. Characteristics of dispersing Ischnura elegans and Coenagrion puella (Odonata): age, sex, size, morph and ectoparasitism // Ecography. 2002. Vol. 25. N 4. P. 439–445.

16. Watts P.C., Rouquette J.R., Saccheri I.J., Kemp S.J., Thompson D.J. Molecular and ecological evidence for small-scale isolation by distance in an endangered damselfly, Coenagrion mercurial // Molecular Ecology. 2004. Vol. 13. N 10. P. 2931–2945.

17. Watts P.C., Saccheri I.J., Kemp S.J., Thompson D.J. Effective population sizes and migration rates in fragmented populations of an endangered insect (Coenagrion mercurial: Odonata) // J. Animal Ecol. 2007. Vol. 76. N 4. P. 790–800.

18. Yablokov A.V., Eatin V.J., Pritikina L.N. Variability of wing venation of the dragonfly // Beitr. Ent. 1970. Vol. 5. N 6. P. 503–526.

19. Захаров В.М., Баранов А.С., Борисов В.И., Валецкий А.В., Кряжева Н.Г., Чистякова Е.К., Ф.Т. Чубинишвили. Здоровье среды: методика оценки. М.: Центр экологической политики России, 2000. 68 с.

20. Bonada N., Prat N., Resh V.H., Statzner B. Developments in aquatic insect biomonitoring: A comparative analysis of recent approaches // Annu. Rev. Entomol. 2006. Vol. 51. P. 495–523.

21. Beasley D.A.E., Bonisoli-Alquati A., Mousseau T.A. The use of fluctuating asymmetry as a measure of environmentally induced developmental instability: a meta-analysis // Ecol. Indic. 2013. Vol. 30. P. 218–226.

22. Ryazanova G.I., Polygalov A.S. Fluctuating asymmetry of wing venation in damselflies Ischnura elegans (V.d. Linden) (Odonata, Coenagrionidae) and prospects of its use as a biological indicator of ecological quality of freshwater reservoirs // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2013. Vol. 68. N 4. P.165–169.

23. Piscart C., Moreteau J-C., Beisel J-N. Decrease of fluctuating asymmetry among larval instars in aquatic, holometabolous insect // C.R. Biol. 2005. Vol. 328. N 10–11. Р. 912–917.

24. Hardersen S., Wratten S.D., Frampton C.M. Does carbaryl increase fuctuating asymmetry in damselflies under field conditions? A mesocosm experiment with Xanthocnemis zealandica (Odonata:Zygoptera) // J. Appl. Ecol. 1999. Vol. 36. N 4. P. 534–543.

25. Piscart C., Moreteau J.-C., Beisel J.-N. Fluctuating asymmetry of natural populations of aquatic insects along a salinity gradient // Environmental Вioindicators. 2006. Vol. 1. N 4. P. 229–241.