Preview

Вестник Московского университета. Серия 16. Биология

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Очистка культур диатомовых водорослей, контаминированных кинетопластидой Bodo saltans Ehrenberg, 1832

Полный текст:

Аннотация

Культивирование диатомовых водорослей сопряжено со многими проблемами, одна из которых касается контаминации культур различными микроорганизмами. Среди контаминантов нередко встречается представитель кинетопластид, свободноживущий бактериотроф Bodo saltans Ehrenberg, 1832. В случае, когда B. saltans достигает большой численности, клетки диатомовых в культуре перестают делиться, часть из них погибает, становясь субстратом для развития бактерий, и вслед за этим представителей следующего трофического звена — кинетопластид. Для очистки культур диатомовых мы применили амфотерицин В — полиеновый макроциклический антибиотик, активный в отношении некоторых простейших и грибов. Проверено действие вещества на B. saltans в культурах восьми видов диатомовых, включая Ardissonea crystallina (C. Agardh) Grunow, Climaconeis scalaris (Brebisson) E.J. Cox, Entomoneis paludosa (W. Smith) Reimer, Haslea karadagensis Davidovich, Gastineau & Mouget, Pleurosigma aestuarii (Brebisson ex Kutzing) W. Smith, Pleurosigma sp., Pseudo-nitzschia calliantha Lundholm, Moestrup & Hasle и P. pungens (Grunow ex P.T. Cleve) Hasle. Экспериментально определена зависимость темпов деления клеток диатомовых, подвергнувшихся воздействию амфотерицина В, от дозы и продолжительности воздействия. Даны рекомендации по использованию ам-фотерицина В для очистки культур диатомовых от B. saltans.

Об авторах

Н. А. Давидович
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Карадагская научная станция имени Т.И. Вяземского — природный заповедник РАН; Natural Sciences Research and Educational Center and Palaeoceanology Unit, University of Szczecin
Россия

Давидович Николай Александрович — кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории водорослей и микробиоты ФГБУН «КНС-ПЗ РАН».

298188, Феодосия, п. Курортное, ул. Науки, д. 24; Mickiewicza 16a, Szczecin, 70-383, тел.: 8-365-622-62-12



О. И. Давидович
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Карадагская научная станция имени Т.И. Вяземского — природный заповедник РАН
Россия

Давидович Ольга Ивановна — кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории водорослей и микробиоты ФГБУН «КНС-ПЗ РАН».

298188, Феодосия, п. Курортное, ул. Науки, д. 24, Тел.: 8-365-622-62-12



Ю. А. Подунай
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Карадагская научная станция имени Т.И. Вяземского — природный заповедник РАН
Россия

Подунай Юлия Александровна — научный сотрудник лаборатории водорослей и микробиоты ФГБУН «КНС-ПЗ РАН».

298188, Феодосия, п. Курортное, ул. Науки, д. 24, Тел.: 8-365-622-62-12



С. Л. Полякова
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Карадагская научная станция имени Т.И. Вяземского — природный заповедник РАН
Россия

Полякова Светлана Леонидовна — младший научный сотрудник лаборатории водорослей и микробиоты ФГБУН «КНС-ПЗ РАН».

298188, Феодосия, п. Курортное, ул. Науки, д. 24, Тел.: 8-365-622-62-12



Р. Гастиньо
Natural Sciences Research and Educational Center and Palaeoceanology Unit, University of Szczecin
Польша

Гастиньо Роман (Gastineau Romain) — Ph.D., научный сотрудник (research assistant), Faculty of Geosciences, US.

Szczecin, Tel.: +48-91-444-1000


Список литературы

1. Mann D.G. Size and sex // The diatom world. Cellular origin, life in extreme habitats and astrobiology. Vol. 19 / Eds. J. Seckbach and J.P. Kociolek. Dordrecht: Springer, 2011. P. 145—166.

2. Round F.E., Crawford R.M., Mann D.G. The Diatoms. Biology and morphology of the genera. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1990. 747 pp.

3. Geitler L. Reproduction and life history in diatoms // Botanical Rev. 1935. Vol. 1. N 5. P. 149—161.

4. Полякова С.Л., Давидович О.И., Подумай Ю.А., Давидович Н.А. Модификация среды ESAW, используемой для культивирования морских диатомовых водорослей // Морской биол. журн. 2018. Т. 3. № 2. С 73—78.

5. Andersen RA, Berges J.A., Harrison P.J., Watanabe M.M. Recipes for freshwater and seawater media // Algal culturing techniques / Ed. R.A. Andersen. N.Y.: Elsevier Academic Press, 2005. P. 429—538.

6. Gastineau R, Lemieux C, Turmel M, Davidovich N.A., Davidovich O.I., Mouget J.-L, Witkowski A. Mitogenome sequence of a Black Sea isolate of the kinetoplastid Bodo saltans // Mitochondrial DNA Part B. 2018. Vol. 3. N 2. P. 970-971.

7. Scheckenbach F, Wylezich C, Mylnikov A.P., Weitere M, Arndt H. Molecular comparisons of freshwater and marine isolates of the same morphospecies of heterotrophic flagellates // Appl. Environ. Microbiol. 2006. Vol. 72. N 10. P. 6638-6643.

8. Wood A.M., Everroad R.C., Wingard L.M. Measuring growth rates in microalgal cultures // Algal culturing techniques / Ed. R.A. Andersen. N.Y.: Elsevier Academic Press, 2005. P. 269-286.

9. Glantz S.A. Primer of biostatistics. N.Y.: McGraw-Hill, Health Professions Division, 1997.473pp.

10. Droop S.J.M. A procedure for routine purification of algal cultures with antibiotics // Br. Phycol. Bull. 1967. Vol. 3. N 2. P. 295-297.

11. Guillard R.R.L. Purification methods for microalgae // Algal culturing techniques / Ed. R.A. Andersen. N.Y.: Elsevier Academic Press, 2005. P. 117-132.

12. Mitchell G.C., Baker J.H., Sleigh M.A. Feeding of a freshwater flagellate, Bodo saltans, on diverse bacteria // J. Eukar. Microbiol. 1988. Vol. 35. N 2. P. 219-222.

13. Жуков Б.Ф. Атлас пресноводных гетеротрофных жгутиконосцев (биология, экология, систематика). Рыбинск: Рыб. Дом печати, 1993. 160 с.

14. Arndt H, Dietrich D, Auer B, Cleven E.-J, Grafenhan T, Weitere M, Mylnikov AP. Functional diversity of heterotrophic flagellates in aquatic ecosystems // The flagellates: unity, diversity and evolution. Vol. 59 / Eds. B.S.C. Leadbeater and J.C. Green. London: Taylor and Francis, 2000. P. 240-268.

15. von der Heyden S, Cavalier-Smith T. Culturing and environmental DNA sequencing uncover hidden kinetoplastid biodiversity and a major marine clade within ancestrally freshwater Neobodo designis // Intern. J. Syst. Evol. Microbiol. 2005.Vol. 55. N 6. P. 2605-2621.

16. Vickerman K, Appleton P. L, Clarke K. J., Moreira D. Aurigamonas solis n. gen., n. sp., a soil-dwelling predator with unusual helioflagellate organisation and belonging to a novel clade within the Cercozoa // Protist. 2005. Vol. 156. N 3. P. 335-354.

17. Yazaki E, Ishikawa S.A., Kume K, Kumagai A., Kamaishi T, Tanifuji G., Hashimoto T., Inagaki Y. Global Kinetoplastea phylogeny inferred from a large-scale multigene alignment including parasitic species for better understanding transitions from a free-living to a parasitic lifestyle // Genes Genet. Syst. 2017. Vol. 92. N 1. P. 35-42.

18. Deeg C.M., Chow C.-E.T., Suttle C.A. The kinetoplastid-infecting Bodo saltans virus (BsV), a window into the most abundant giant viruses in the sea // eLife. 2018. Vol. 7: e33014.


Для цитирования:


Давидович Н.А., Давидович О.И., Подунай Ю.А., Полякова С.Л., Гастиньо Р. Очистка культур диатомовых водорослей, контаминированных кинетопластидой Bodo saltans Ehrenberg, 1832. Вестник Московского университета. Серия 16. Биология. 2019;74(2):80–86.

For citation:


Davidovich N.A., Davidovich O.I., Podunay Y.A., Polyakova S.L., Gastineau R. Treating of diatom algae cultures contaminated with the kinetoplastid Bodo saltans Ehrenberg, 1832. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya. 2019;74(2):80–86. (In Russ.)

Просмотров: 30


ISSN 0137-0952 (Print)